摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-13页 |
第1章 绪论 | 第13-25页 |
·研究背景 | 第13页 |
·蚜虫现有的防治方法 | 第13-14页 |
·农业防治 | 第14页 |
·生物防治 | 第14页 |
·药剂防治 | 第14页 |
·选题意义 | 第14-15页 |
·国内外研究现状 | 第15-20页 |
·植物凝集素的定义 | 第15-16页 |
·植物凝集素的抗虫机理 | 第16页 |
·转基因工程中植物凝集素的应用进展 | 第16-20页 |
·小麦转基因常用的几种方法 | 第20-23页 |
·基因枪转化法 | 第20-21页 |
·农杆菌介导法 | 第21-22页 |
·花粉管通道法 | 第22-23页 |
·课题来源 | 第23页 |
·研究内容 | 第23-25页 |
·小麦愈伤组织的诱导 | 第23-24页 |
·小麦愈伤组织的遗传转化 | 第24页 |
·筛选已转化的小麦愈伤组织 | 第24页 |
·农杆菌转化的愈伤组织的分化再生 | 第24页 |
·再生植株的后期鉴定 | 第24-25页 |
第2章 转基因受体材料的获得 | 第25-39页 |
·概述 | 第25-26页 |
·实验材料、试剂以及实验设备 | 第26-28页 |
·实验材料 | 第26页 |
·实验试剂 | 第26-27页 |
·实验器材与设备 | 第27-28页 |
·实验方法 | 第28-34页 |
·MS 培养基各种母液及 MS 培养基的配制 | 第28-32页 |
·愈伤组织的诱导及分化 | 第32-33页 |
·小麦愈伤组织的诱导 | 第33-34页 |
·数据处理 | 第34页 |
·实验结果 | 第34-36页 |
·胚性愈伤组织的诱导结果 | 第34-35页 |
·不同培养基上小麦的愈伤诱导率 | 第35-36页 |
·不同小麦品种的分化率 | 第36页 |
·本章小结 | 第36-39页 |
第3章 农杆菌转化法介导的小麦转化 | 第39-59页 |
·概述 | 第39-42页 |
·利用农杆菌转化法转基因的研究意义 | 第39-40页 |
·农杆菌转化法的研究进展 | 第40-41页 |
·农杆菌转化法转基因的机理 | 第41-42页 |
·实验材料、试剂与设备 | 第42-44页 |
·实验材料 | 第42-43页 |
·实验试剂 | 第43页 |
·实验设备与仪器 | 第43-44页 |
·实验方法 | 第44-48页 |
·微生物培养基、遗传转化培养基、AS 母液以及 GUS 染液的配制 | 第44-46页 |
·实验受体材料的预处理 | 第46页 |
·实验菌株的获得 | 第46页 |
·农杆菌介导的小麦转化 | 第46-48页 |
·农杆菌介导小麦转化体系的优化 | 第48-50页 |
·重悬前后菌液浓度影响 | 第48页 |
·农杆菌侵染时间的优化 | 第48-49页 |
·抑菌方法的优化 | 第49页 |
·不同菌种、启动子对农杆菌转化效果的影响 | 第49-50页 |
·不同受体对农杆菌转化的影响 | 第50页 |
·筛选培养基中潮霉素浓度的优化 | 第50页 |
·结果与分析 | 第50-55页 |
·重悬前后不同菌液浓度的影响结果及分析 | 第50-51页 |
·农杆菌侵染时间的优化结果及分析 | 第51页 |
·抑菌方法的优化结果及分析 | 第51页 |
·不同菌种、启动子对农杆菌转化效果的影响结果 | 第51-52页 |
·不同受体对农杆菌转化的影响结果及分析 | 第52-55页 |
·筛选培养基中潮霉素浓度的优化结果及分析 | 第55页 |
·潮霉素筛选阳性植株的获得 | 第55-56页 |
·本章小结 | 第56-59页 |
第4章 抗蚜虫基因 PPA 小麦转化植株的筛选鉴定 | 第59-67页 |
·概述 | 第59页 |
·实验材料、试剂以及实验设备 | 第59-61页 |
·实验材料 | 第59页 |
·实验试剂 | 第59-60页 |
·实验仪器 | 第60-61页 |
·小麦叶片基因组 DNA 的提取及鉴定 | 第61-64页 |
·小麦叶片基因组 DNA 的提取 | 第61页 |
·提取的小麦叶片基因组 DNA 的检测 | 第61-63页 |
·PCR 检测 | 第63-64页 |
·结果与分析 | 第64-67页 |
·潮霉素筛选阳性植株小麦叶片基因组 DNA 的检测 | 第64页 |
·PCR 检测结果 | 第64-65页 |
·抗虫鉴定 | 第65-67页 |
结论 | 第67-70页 |
附录 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-78页 |
致谢 | 第78-79页 |