摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-11页 |
第一章 前言 | 第11-25页 |
1 研究背景 | 第12-13页 |
2 血根碱的研究进展 | 第13-18页 |
·血根碱的提取工艺 | 第13-14页 |
·血根碱的抗菌作用 | 第14-15页 |
·血根碱的杀虫活性 | 第15-16页 |
·血根碱的抗肿瘤作用 | 第16-17页 |
·其他 | 第17-18页 |
3 氧化损伤的研究进展 | 第18-19页 |
4 细胞凋亡的研究进展 | 第19-24页 |
·细胞凋亡特征 | 第19页 |
·细胞凋亡的基因调控 | 第19-20页 |
·细胞凋亡的检测 | 第20-24页 |
·荧光显微镜 | 第20页 |
·电子显微镜 | 第20页 |
·激光共聚焦显微镜 | 第20-21页 |
·DNA凝胶电泳法 | 第21页 |
·TUNEL法 | 第21-22页 |
·流式细胞术(FCM) | 第22页 |
·胞内相关组分的检测 | 第22-24页 |
5 本研究的目的意义 | 第24-25页 |
第二章 大鼠肠平滑肌细胞的原代培养和鉴定 | 第25-35页 |
1 材料与方法 | 第25-29页 |
·试验材料 | 第25-26页 |
·试验动物 | 第25页 |
·主要试剂 | 第25页 |
·主要仪器 | 第25-26页 |
·主要试剂的配制 | 第26页 |
·试验方法 | 第26-29页 |
·大鼠肠平滑肌的分离和原代培养 | 第26-28页 |
·培养细胞的鉴定 | 第28-29页 |
·大鼠肠平滑肌细胞的冻存与复苏 | 第29页 |
2 结果与分析 | 第29-31页 |
·ISMC细胞的原代培养及形态观察 | 第29-30页 |
·ISMC细胞的传代、冻存和复苏 | 第30-31页 |
·免疫细胞化学鉴定大鼠肠平滑肌细胞 | 第31页 |
3 讨论 | 第31-34页 |
·大鼠肠平滑肌细胞的分离和鉴定 | 第32-33页 |
·大鼠肠平滑肌细胞的传代、冻存和复苏 | 第33-34页 |
4 小结 | 第34-35页 |
第三章 生长曲线绘制和血根碱对细胞活率的影响 | 第35-41页 |
1 材料与方法 | 第35-37页 |
·试验材料 | 第35-36页 |
·主要试剂 | 第35页 |
·主要仪器 | 第35-36页 |
·试剂的配制 | 第36页 |
·试验方法 | 第36-37页 |
·生长曲线的绘制 | 第36页 |
·MTT法检测血根碱对大鼠肠平滑肌细胞活率的影响 | 第36-37页 |
·数据分析 | 第37页 |
2 结果和分析 | 第37-39页 |
·细胞生长曲线 | 第37-38页 |
·血根碱对大鼠肠平滑肌细胞活率的影响 | 第38-39页 |
3 讨论 | 第39-40页 |
·细胞生长曲线 | 第39页 |
·血根碱对大鼠肠平滑肌细胞活率的影响 | 第39-40页 |
4 小结 | 第40-41页 |
第四章 血根碱对大鼠肠平滑肌细胞细胞凋亡的影响 | 第41-53页 |
1 材料与方法 | 第41-44页 |
·试验材料 | 第41-42页 |
·试验动物 | 第41页 |
·主要试剂 | 第41页 |
·主要仪器 | 第41-42页 |
·试剂配制 | 第42页 |
·试验方法 | 第42-44页 |
·血根碱对细胞产生ROS的影响 | 第42-43页 |
·血根碱对大鼠肠平滑肌细胞内MDA含量的影响 | 第43页 |
·SA对ISMC细胞DNA断裂的影响 | 第43-44页 |
·Annexin-FITC/PI双染法检测血根碱诱导细胞凋亡 | 第44页 |
2 结果和分析 | 第44-49页 |
·血根碱对大鼠肠平滑肌细胞ROS生成的影响 | 第44-46页 |
·SA对大鼠肠平滑肌细胞内MDA含量的影响 | 第46-47页 |
·标准曲线绘制结果 | 第46页 |
·样品测定结果 | 第46-47页 |
·SA对大鼠肠平滑肌细胞DNA断裂的影响 | 第47-48页 |
·流式细胞术检测细胞凋亡 | 第48-49页 |
3 讨论 | 第49-51页 |
·血根碱对大鼠肠平滑肌细胞的氧化损伤 | 第49-50页 |
·血根碱对大鼠肠平滑肌细胞凋亡的影响 | 第50-51页 |
4 小结 | 第51-53页 |
第五章 结论和创新点 | 第53-54页 |
1 结论 | 第53页 |
2 创新点 | 第53-54页 |
参考文献 | 第54-62页 |
致谢 | 第62-63页 |
作者简介 | 第63页 |