| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-15页 |
| 绪论 | 第15-40页 |
| 1 壳聚糖概述 | 第15-25页 |
| ·壳聚糖的活性作用 | 第16-19页 |
| ·壳聚糖作为药物缓释载体的类型 | 第19-23页 |
| ·壳聚糖微球制备方法 | 第23-25页 |
| 2. 介入治疗与动脉栓塞术 | 第25-37页 |
| ·介入治疗 | 第25-27页 |
| ·经导管动脉栓塞术 | 第27页 |
| ·栓塞治疗应用范围 | 第27-30页 |
| ·栓塞材料 | 第30-34页 |
| ·动脉栓塞微球在介入治疗中的应用 | 第34-36页 |
| ·目前动脉栓塞微球不足和展望 | 第36-37页 |
| 3 立题背景及研究内容 | 第37-40页 |
| ·背景 | 第37-38页 |
| ·研究内容 | 第38-39页 |
| ·技术路线 | 第39-40页 |
| 第一章 单因素分析法制备壳聚糖微球 | 第40-49页 |
| 前言 | 第40页 |
| 1. 材料 | 第40-41页 |
| ·材料与试剂 | 第40-41页 |
| ·主要仪器 | 第41页 |
| 2. 方法 | 第41-42页 |
| ·壳聚糖微球的制备 | 第41页 |
| ·壳聚糖浓度的影响 | 第41页 |
| ·醋酸浓度的影响 | 第41页 |
| ·不同油相的影响 | 第41页 |
| ·不同 O/W 比例的影响 | 第41页 |
| ·乳化剂的影响 | 第41页 |
| ·交联剂及用量的影响 | 第41-42页 |
| 3 结果与讨论 | 第42-47页 |
| ·壳聚糖浓度对微球制备的影响 | 第42-43页 |
| ·醋酸浓度对微球制备的影响 | 第43-44页 |
| ·不同油相对微球制备的影响 | 第44页 |
| ·不同 O/W 比例对微球制备的影响 | 第44-45页 |
| ·乳化剂对微球制备的影响 | 第45-46页 |
| ·交联剂的选择及用量对微球制备的影响 | 第46-47页 |
| 4 结论 | 第47-49页 |
| 第二章 响应面分析法优化制备壳聚糖微球的研究 | 第49-65页 |
| 前言 | 第49-50页 |
| 1. 材料 | 第50页 |
| ·材料与试剂 | 第50页 |
| ·主要仪器 | 第50页 |
| 2. 方法 | 第50-54页 |
| ·壳聚糖微球的制备 | 第50-51页 |
| ·响应面分析法的建立 | 第51-53页 |
| ·CMs 的形态学观察 | 第53页 |
| ·实验数据统计分析 | 第53-54页 |
| 3 结果与讨论 | 第54-63页 |
| ·通过 PBD 设计筛选影响 CMs 形成的影响因素 | 第54-55页 |
| ·最陡爬坡实验结果 | 第55页 |
| ·Box‐Behnken 实验结果 | 第55-58页 |
| ·响应面法优化实验条件 | 第58-62页 |
| ·CMs 表面形态观察 | 第62-63页 |
| 4 结论 | 第63-65页 |
| 第三章 壳聚糖微球及其乙酰化微球理化特性 | 第65-84页 |
| 前言 | 第65-66页 |
| 1. 材料 | 第66页 |
| ·材料与试剂 | 第66页 |
| ·主要仪器 | 第66页 |
| 2. 方法 | 第66-69页 |
| ·壳聚糖微球及其乙酰化微球的制备 | 第66页 |
| ·微球的表面形态及粒径分析 | 第66页 |
| ·壳聚糖及微球的红外光谱分析 | 第66-67页 |
| ·壳聚糖及微球脱乙酰度的测定 | 第67页 |
| ·微球的溶胀率的测定 | 第67-68页 |
| ·微球的热稳定性测定 | 第68页 |
| ·微球的体外降解测定 | 第68页 |
| ·数据分析 | 第68-69页 |
| 3 结果与讨论 | 第69-83页 |
| ·微球的表面形态及粒径 | 第69-72页 |
| ·微球的红外光谱 | 第72-73页 |
| ·壳聚糖及微球的脱乙酰度 | 第73-76页 |
| ·微球的溶胀性 | 第76-79页 |
| ·微球的稳定性 | 第79-80页 |
| ·微球的体外降解 | 第80-83页 |
| 4 结论 | 第83-84页 |
| 第四章 壳聚糖微球及其乙酰化微球体外生物学特性 | 第84-99页 |
| 前言 | 第84-85页 |
| 1. 材料 | 第85页 |
| ·材料与试剂 | 第85页 |
| ·主要仪器 | 第85页 |
| 2. 方法 | 第85-89页 |
| ·微球对 BSA 蛋白的吸附性测定 | 第85-86页 |
| ·微球血液相容测定 | 第86-87页 |
| ·微球细胞毒性测定 | 第87-89页 |
| ·数据分析 | 第89页 |
| 3 结果与讨论 | 第89-97页 |
| ·微球对 BSA 的吸附性 | 第89-91页 |
| ·微球的溶血率 | 第91-93页 |
| ·微球的致血栓性 | 第93-94页 |
| ·微球细胞毒性实验 | 第94-96页 |
| ·MEFs 细胞形态学观察 | 第96-97页 |
| 4 结论 | 第97-99页 |
| 第五章 微球的生物安全性及兔耳栓塞研究 | 第99-125页 |
| 前言 | 第99-100页 |
| 1. 材料 | 第100页 |
| ·材料与试剂 | 第100页 |
| ·主要仪器 | 第100页 |
| 2. 方法 | 第100-109页 |
| ·材料浸提液的制备 | 第100-101页 |
| ·皮肤迟发型超敏反应 (delayed-type hypersensitization)实验 | 第101-103页 |
| ·皮肤刺激性实验 | 第103-105页 |
| ·眼刺激实验 | 第105-106页 |
| ·小鼠全身急毒实验 | 第106-107页 |
| ·体内埋植实验 | 第107-108页 |
| ·动脉栓塞实验 | 第108页 |
| ·数据分析 | 第108-109页 |
| 3 结果与讨论 | 第109-124页 |
| ·皮肤迟发型超敏反应实验结果 | 第109-110页 |
| ·皮肤刺激性实验结果 | 第110-112页 |
| ·眼刺激实验结果 | 第112-113页 |
| ·小鼠全身急毒实验结果 | 第113-114页 |
| ·体内埋植实验结果 | 第114-121页 |
| ·兔耳栓塞实验结果 | 第121-124页 |
| 4 结论 | 第124-125页 |
| 第六章 阿霉素载药微球的制备及体外释放 | 第125-134页 |
| 前言 | 第125页 |
| 1. 材料 | 第125-126页 |
| ·材料与试剂 | 第125-126页 |
| ·主要仪器 | 第126页 |
| 2. 方法 | 第126-127页 |
| ·盐酸阿霉素微球的制备 | 第126页 |
| ·盐酸阿霉素标准曲线的绘制 | 第126页 |
| ·盐酸阿霉素微球载药量和包封率 | 第126-127页 |
| ·盐酸阿霉素微球体外释放 | 第127页 |
| ·数据分析 | 第127页 |
| 3 结果与讨论 | 第127-132页 |
| ·盐酸阿霉素标准曲线的建立 | 第127-129页 |
| ·盐酸阿霉素微球包封率和载药量测定 | 第129页 |
| ·盐酸阿霉素微球体外释放的测定 | 第129-132页 |
| 4 结论 | 第132-134页 |
| 全文结论 | 第134-138页 |
| 1 主要结论 | 第134-137页 |
| 2 论文创新点 | 第137页 |
| 3 存在的问题及展望 | 第137-138页 |
| 参考文献 | 第138-152页 |
| 附录 | 第152-153页 |
| 致谢 | 第153-154页 |
| 个人简历 | 第154页 |
| 发表的学术论文 | 第154页 |