| 目录 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 第一部分 文献综述 | 第13-31页 |
| 第一章 中国牦牛的杂交改良及杂种一代犏牛雄性不育 | 第13-19页 |
| 1 中国的牦牛资源及其生产性能 | 第13-15页 |
| 2 牦牛的杂交改良 | 第15-16页 |
| 3 犏牛雄性不育 | 第16-19页 |
| 第二章 联会复合体在精子发生中的作用 | 第19-31页 |
| 1 精子发生及影响因素 | 第19-21页 |
| ·精子发生 | 第19页 |
| ·支持细胞在精子发生中的作用 | 第19-20页 |
| ·激素在精子发生中的作用 | 第20-21页 |
| ·精子发生过程中染色质的变化 | 第21页 |
| 2 精子发生各阶段细胞的基因表达 | 第21-23页 |
| ·精原细胞中的基因表达 | 第21-22页 |
| ·精母细胞中的基因表达 | 第22页 |
| ·精子细胞中的基因表达 | 第22页 |
| ·非生精细胞的表达调控 | 第22-23页 |
| 3 联会复合体在减数分裂中的重要作用 | 第23-29页 |
| ·精母细胞减数分裂 | 第23-24页 |
| ·联会复合体研究进展 | 第24-26页 |
| ·联会复合体相关基因的研究进展 | 第26-28页 |
| ·联会复合体与犏牛雄性不育的关系 | 第28-29页 |
| 4 育性性别的二态性(sexual dimorphism) | 第29-31页 |
| 第二部分 试验研究 | 第31-69页 |
| 第一章 牦牛、犏牛睾丸形态组织学分析 | 第31-37页 |
| 1.材料与方法 | 第31-33页 |
| ·试验动物 | 第31页 |
| ·组织切片的制备 | 第31-33页 |
| 2 结果与分析 | 第33-34页 |
| 3 讨论 | 第34-35页 |
| 4.小结 | 第35-37页 |
| 第二章 牦牛、犏牛睾丸组织中SYCP1基因mRNA表达水平研究 | 第37-47页 |
| 1 材料与方法 | 第38-41页 |
| ·试验动物 | 第38页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第38页 |
| ·组织切片的制备 | 第38-39页 |
| ·组织总RNA提取和反转录 | 第39-40页 |
| ·引物设计与合成 | 第40页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第40-41页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第41页 |
| 2 结果与分析 | 第41-44页 |
| ·牦牛、犏牛SYCPl基因和β-action基因RT-PCR扩增结果 | 第41-42页 |
| ·牦牛SYCP1基因的组织表达谱分析 | 第42-43页 |
| ·牦牛和犏牛睾丸组织SYCP1基因mRNA表达水平分析 | 第43-44页 |
| 3 讨论 | 第44-45页 |
| 4 小结 | 第45-47页 |
| 第三章 牦牛、犏牛睾丸组织中SYCP2基因mRNA表达水平研究 | 第47-55页 |
| 1 材料与方法 | 第47-49页 |
| ·试验动物 | 第47页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第47-48页 |
| ·组织切片的制备 | 第48页 |
| ·组织总RNA提取和反转录 | 第48页 |
| ·引物设计与合成 | 第48页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第48页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第48-49页 |
| 2 结果与分析 | 第49-52页 |
| ·牦牛、犏牛SYCP2基因和β-action基因RT-PCR扩增结果 | 第49-50页 |
| ·牦牛SYCP2基因的组织表达谱分析 | 第50页 |
| ·牦牛和犏牛睾丸组织SYCP2基因mRNA表达水平分析 | 第50-52页 |
| 3 讨论 | 第52-53页 |
| 4 小结 | 第53-55页 |
| 第四章 牦牛、犏牛睾丸组织中SYCP3基因mRNA表达水平研究 | 第55-63页 |
| 1 材料与方法 | 第55-57页 |
| ·试验动物 | 第55页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第55页 |
| ·组织切片的制备 | 第55-56页 |
| ·组织总RNA提取和反转录 | 第56页 |
| ·引物设计与合成 | 第56页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第56页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第56-57页 |
| 2 结果与分析 | 第57-60页 |
| ·牦牛、犏牛SYCP3基因和β-action基因RT-PCR扩增结果 | 第57-58页 |
| ·牦牛SYCP3基因的组织表达谱分析 | 第58页 |
| ·牦牛和犏牛睾丸组织SYCP3基因mRNA表达水平分析 | 第58-60页 |
| 3 讨论 | 第60-61页 |
| 4 小结 | 第61-63页 |
| 第五章 牦牛、犏牛睾丸组织中FKBP6基因mRNA表达水平研究 | 第63-69页 |
| 1 材料与方法 | 第63-65页 |
| ·试验动物 | 第63页 |
| ·主要试剂和仪器 | 第63页 |
| ·组织切片的制备 | 第63页 |
| ·组织总RNA提取和反转录 | 第63-64页 |
| ·引物设计与合成 | 第64页 |
| ·PCR反应和产物回收及克隆测序 | 第64页 |
| ·荧光实时定量PCR | 第64-65页 |
| 2 结果与讨论 | 第65-67页 |
| ·牦牛、犏牛FKBP6基因和β-action基因RT-PCR扩增结果 | 第65页 |
| ·牦牛FKBP6基因的组织表达谱分析 | 第65-66页 |
| ·牦牛和犏牛睾丸组织FKBP6基因mRNA表达水平分析 | 第66-67页 |
| 3 讨论 | 第67-68页 |
| 4 小结 | 第68-69页 |
| 全文结论 | 第69-71页 |
| 创新点 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 附录 | 第81-83页 |
| 1 组织切片试剂配制 | 第81页 |
| ·磷酸缓冲盐溶液(PBS): | 第81页 |
| ·10%中性甲醛固定液: | 第81页 |
| ·生理盐水 | 第81页 |
| 2 RNA提取所需DEPC水的配制 | 第81页 |
| 3 聚丙烯酰胺电泳及银染配方 | 第81-82页 |
| ·PAGE电泳 | 第81-82页 |
| ·银染 | 第82页 |
| 4 琼脂糖电泳试剂配制 | 第82-83页 |
| 致谢 | 第83-85页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第85页 |
