| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7页 |
| 英文缩写词表 | 第7-12页 |
| 文献综述 | 第12-22页 |
| 1 引言 | 第22-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-40页 |
| ·实验材料 | 第24-28页 |
| ·实验动物的组织 | 第24页 |
| ·菌株与载体 | 第24页 |
| ·主要工具酶及试剂盒 | 第24页 |
| ·其他相关试剂 | 第24页 |
| ·标准参照物 | 第24-25页 |
| ·缓冲液及培养基的配制 | 第25-26页 |
| ·仪器设备 | 第26-28页 |
| ·实验方法 | 第28-40页 |
| ·鸡13种防御素基因的克隆及组织表达 | 第28-31页 |
| ·鸡Gal-2基因的克隆载体及原核表达载体的构建 | 第31-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-53页 |
| ·鸡不同组织总RNA的提取 | 第40-41页 |
| ·鸡GAL基因的克隆及其在各个组织中的分布 | 第41-50页 |
| ·凝胶电泳图 | 第41-45页 |
| ·测序比对结果 | 第45-49页 |
| ·Gal基因组织分布 | 第49-50页 |
| ·鸡GAL-2基因的克隆及表达 | 第50-53页 |
| ·Gal-2基因在不同日龄(7日、30日、365日)鸡骨髓中的表达情况 | 第50页 |
| ·鸡重组质粒pGEM-T-Gal-2的PCR鉴定 | 第50-51页 |
| ·鸡重组质粒pGEM-T-Gal-2的双酶切鉴定 | 第51页 |
| ·鸡重组质粒pMAL-c_2X-Gal-2菌落PCR鉴定 | 第51页 |
| ·鸡重组质粒pMAL-c_2X-Gal-2的双酶切鉴定 | 第51-52页 |
| ·经IPTG诱导表达后的蛋白电泳图 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| ·鸡防御素基因的克隆和组织分布 | 第53页 |
| ·关于实验方法 | 第53-55页 |
| ·反转录温度的选择 | 第53-54页 |
| ·Gal-2基因的引物设计 | 第54页 |
| ·载体克隆策略 | 第54页 |
| ·pMAL-c_2x原核表达载体的选择 | 第54-55页 |
| ·实验动物的选取对GAL-2基因表达的影响 | 第55页 |
| ·本实验的后续研究 | 第55-57页 |
| 5 结论 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64页 |
| 在读期间撰写的学术论文 | 第64页 |
