| 中文摘要 | 第1-5页 |
| 英文摘要 | 第5-10页 |
| 1 绪论 | 第10-20页 |
| ·干扰素(Interferon IFN)简介 | 第10-11页 |
| ·IFN 的分类 | 第10页 |
| ·IFN 的作用 | 第10-11页 |
| ·IFN-ω的研究 | 第11-12页 |
| ·蛋白质和多肽类药物的研究方法 | 第12-17页 |
| ·蛋白质和多肽类药物研究现状和研究特点 | 第12-13页 |
| ·目前蛋白质多肽药物分析方法 | 第13-17页 |
| ·体内药物浓度测定方法评价标准 | 第17页 |
| ·课题的选题背景和研究目的 | 第17-18页 |
| ·课题的研究内容 | 第18-19页 |
| ·研究内容 | 第18-19页 |
| ·技术路线 | 第19页 |
| ·课题的创新点 | 第19-20页 |
| 2 rHu IFN-ω抗体的制备 | 第20-34页 |
| ·概述 | 第20页 |
| ·实验动物和仪器 | 第20页 |
| ·实验动物 | 第20页 |
| ·实验仪器 | 第20页 |
| ·实验方法 | 第20-27页 |
| ·实验动物的免疫及抗血清的制备 | 第20-22页 |
| ·rHu IFN-ω抗体的纯化 | 第22-24页 |
| ·抗体的SDS-PAGE 电泳 | 第24-26页 |
| ·间接ELISA 检测纯化抗体效价 | 第26-27页 |
| ·纯化抗体浓度的测定 | 第27页 |
| ·实验结果与分析 | 第27-34页 |
| ·抗血清的制备 | 第27-29页 |
| ·rHu IFN-ω抗体的纯化 | 第29页 |
| ·抗体的SDS-PAGE 电泳 | 第29-30页 |
| ·间接ELISA 检测纯化抗体效价 | 第30-31页 |
| ·纯化抗体浓度测定 | 第31-32页 |
| ·小结 | 第32-34页 |
| 3 酶标抗体的制备 | 第34-38页 |
| ·概述 | 第34页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第34页 |
| ·实验仪器 | 第34页 |
| ·主要试剂 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-36页 |
| ·抗体标记步骤 | 第34-35页 |
| ·标记混合物的纯化 | 第35页 |
| ·酶标抗体活性检测 | 第35-36页 |
| ·实验结果与分析 | 第36-38页 |
| 4 双抗夹心 ELISA 最佳实验条件的选择 | 第38-41页 |
| ·概述 | 第38页 |
| ·仪器和试剂 | 第38页 |
| ·实验仪器 | 第38页 |
| ·主要试剂 | 第38页 |
| ·实验方案 | 第38页 |
| ·实验方法 | 第38-39页 |
| ·实验结果与分析 | 第39-41页 |
| 5 双抗夹心 ELISA 标准曲线的制作 | 第41-53页 |
| ·概述 | 第41页 |
| ·仪器和试剂 | 第41-42页 |
| ·实验仪器 | 第41页 |
| ·实验试剂 | 第41-42页 |
| ·实验方法 | 第42页 |
| ·实验结果与讨论 | 第42-53页 |
| ·用原倍血清配制rHu IFN-ω标准品制作标准曲线 | 第42-45页 |
| ·用稀释5 倍血清配制rHu IFN-ω标准品制作标准曲线 | 第45-48页 |
| ·用稀释10 倍血清配制rHu IFN-ω标准品制作标准曲线 | 第48-50页 |
| ·三条标准曲线的比较 | 第50-51页 |
| ·样品稀释对测定样品中rHu IFN-ω浓度的影响 | 第51-52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| 6 双抗夹心 ELISA 的方法学考察 | 第53-61页 |
| ·概述 | 第53页 |
| ·仪器和试剂 | 第53页 |
| ·实验仪器 | 第53页 |
| ·主要试剂 | 第53页 |
| ·实验方法 | 第53-54页 |
| ·精密度实验 | 第53-54页 |
| ·回收率实验 | 第54页 |
| ·灵敏度实验 | 第54页 |
| ·实验结果与讨论 | 第54-61页 |
| ·精密度实验 | 第54-55页 |
| ·回收率实验 | 第55-56页 |
| ·灵敏度实验 | 第56-57页 |
| ·特异性 | 第57页 |
| ·用于定量检测rHu IFN-ω双抗夹心EL ISA 的基本参数 | 第57-58页 |
| ·用于定量检测IFN 方法的比较 | 第58-61页 |
| 7 结论与展望 | 第61-63页 |
| ·结论 | 第61-62页 |
| ·展望 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-68页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文目录 | 第68页 |
