| 中文摘要 | 第1-12页 |
| 英文摘要 | 第12-18页 |
| 符号说明 | 第18-20页 |
| 论文一：IFNγ和IFNα对NKG2受体系统的相反调节效应 | 第20-58页 |
| 前言 | 第20-23页 |
| 材料与方法 | 第23页 |
| 主要实验材料 | 第23-27页 |
| 主要仪器设备 | 第27-28页 |
| 主要实验方法 | 第28-33页 |
| 1.细胞培养、冻存和复苏 | 第28-29页 |
| 2.外周血新鲜NK细胞的分离 | 第29页 |
| 3.NK细胞毒活性测定 | 第29-30页 |
| 4.NK细胞增殖活性测定 | 第30页 |
| 5.流式细胞术检测细胞表面分子 | 第30-31页 |
| 6.半定量RT-PCR检测目的基因的表达 | 第31-33页 |
| 结果 | 第33-38页 |
| 1.三种NK细胞系对肿瘤细胞的杀伤活性 | 第33页 |
| 2.rhIFN-α和rhIFN-γ对NK细胞杀伤活性的影响 | 第33-34页 |
| 3.rhIFN-α和rhIFN-γ对NK细胞增殖能力的影响 | 第34页 |
| 4.rhIFN-α和rhIFN-γ对NK细胞受体表达水平的不同影响 | 第34-36页 |
| 5.NKG2受体阻断对rhIFN-α和rhIFN-γ的作用的影响 | 第36-38页 |
| 讨论 | 第38-43页 |
| 1.NK细胞受体 | 第38-39页 |
| 2.NK细胞的识别机制及NKG2受体家族在免疫调节中的作用 | 第39-40页 |
| 3.IFNγ和IFNα对NKG2受体系统的相反调节效应及意义 | 第40-43页 |
| 参考文献 | 第43-48页 |
| 附录：图表 | 第48-58页 |
| 论文二：膜型和分泌型MICA对NK细胞受体NKG2D的相反调节效应及在肿瘤免疫逃逸中的作用 | 第58-97页 |
| 前言 | 第58-60页 |
| 材料与方法 | 第60页 |
| 主要实验材料 | 第60-66页 |
| 主要仪器设备 | 第66-67页 |
| 主要实验方法 | 第67-76页 |
| 1.细胞培养、冻存和复苏 | 第67页 |
| 2.肿瘤组织标本的收集 | 第67页 |
| 3.NK细胞毒活性测定 | 第67页 |
| 4.pBV220／rsMICA表达载体的构建和sMICA的表达、纯化 | 第67-73页 |
| 5.半定量RT-PCR检测目的基因的表达 | 第73-75页 |
| 6.流式细胞术检测细胞表面NK受体的表达 | 第75页 |
| 7.免疫组化检测肿瘤组织和肿瘤细胞系MICA的表达 | 第75-76页 |
| 结果 | 第76-79页 |
| 1.肿瘤细胞和肿瘤组织表达MICA | 第76-77页 |
| 2.肿瘤细胞MICA表达与NK细胞杀伤敏感性的关系 | 第77-78页 |
| 3.NK92细胞与肿瘤细胞接触不同时间，其表面NK受体表达的变化 | 第78页 |
| 4.NK92细胞与肿瘤细胞接触不同时间，杀伤效应分子表达的变化 | 第78页 |
| 5.rsMICA的制备 | 第78-79页 |
| 6.rsMICA对NK92细胞表面NKR表达及细胞毒活性的影响 | 第79页 |
| 讨论 | 第79-83页 |
| 1.肿瘤细胞表达NKG2D配体与NK杀伤敏感性的关系 | 第79-80页 |
| 2.重组可溶性MICA的制备 | 第80-81页 |
| 3.NK细胞与靶细胞接触活化的机制初探 | 第81-82页 |
| 4.膜型和可溶性MICA对NKG2受体的相反调节作用及膜型和可溶性MICA平衡在肿瘤免疫逃逸中的作用 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-87页 |
| 附录：图表 | 第87-97页 |
| 文献综述 | 第97-106页 |
| 致谢 | 第106-107页 |
| 攻读博士学位期间发表的主要学术论文目录 | 第107-109页 |
| 攻读博士学位期间承担或参加的科研课题 | 第109页 |
| 攻读博士学位期间获得的科研奖励 | 第109-110页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第110页 |
