| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-10页 |
| 本文缩略词 | 第10-12页 |
| 前言 | 第12-13页 |
| Ⅰ． 文献综述 | 第13-33页 |
| 1． 水稻转基因研究进展 | 第13-22页 |
| 1．1． 水稻遗传转化方法研究进展 | 第13-15页 |
| 1．2． 目的基因研究进展 | 第15-21页 |
| 1．3． 报告基因和筛选标记基因研究进展 | 第21-22页 |
| 1．4． 外源基因表达调控研究进展 | 第22页 |
| 2． 转基因沉默及其控制策略研究进展 | 第22-25页 |
| 2．1． DNA甲基化造成的外源基因沉默及其控制策略 | 第23页 |
| 2．2． 重复序列诱发转基因失活及其控制策略 | 第23-24页 |
| 2．3． 反式失活及其控制策略 | 第24-25页 |
| 2．4． 共抑制引起的基因失活及其控制策略 | 第25页 |
| 3． 核基质结合区（MARs）的研究进展 | 第25-28页 |
| 3．1． MARs的分类 | 第26页 |
| 3．2． MARs的结构 | 第26-27页 |
| 3．3． MARs在转基因中的功能 | 第27-28页 |
| 4． 无选择标记转基因植物研究进展 | 第28-32页 |
| 4．1． 在转基因植物中去除选择标记基因的必要性 | 第28-29页 |
| 4．2． 去除选择标记基因的策略 | 第29-32页 |
| 5． 本文立题思想 | 第32-33页 |
| Ⅱ． 材料与方法 | 第33-51页 |
| 1． 实验材料 | 第33-34页 |
| 1．1． 受体水稻材料 | 第33页 |
| 1．2． 供体质粒 | 第33-34页 |
| 1．3． 供试菌株 | 第34页 |
| 2． 重要仪器设备 | 第34-35页 |
| 3． 重要试剂与溶液 | 第35-39页 |
| 3．1． 重要试剂 | 第35-36页 |
| 3．2． 检测溶液（或试剂） | 第36-39页 |
| 4． 培养基配制 | 第39-41页 |
| 5． 实验方法 | 第41-51页 |
| 5．1． 水稻愈伤组织的诱导 | 第41-42页 |
| 5．2． 基因枪介导法转化水稻 | 第42-43页 |
| 5．3． 农杆菌介导法转化水稻 | 第43-44页 |
| 5．4． pCDMARUSCK-HPT的构建方法 | 第44页 |
| 5．5． 转基因的分子鉴定 | 第44-46页 |
| 5．6． 外源基因表达产物检测 | 第46-49页 |
| 5．7． 转基因水稻农艺性状考查 | 第49页 |
| 5．8． 子代潮霉素抗性遗传分析 | 第49页 |
| 5．9． 转基因植株抗虫性分析 | 第49-51页 |
| Ⅲ． 试验结果与分析 | 第51-87页 |
| 1． 水稻遗传转化系统的建立和优化 | 第51-57页 |
| 1．1． 愈伤组织的诱导 | 第51-52页 |
| 1．2． 水稻不同外殖体愈伤组织继代活力的比较 | 第52页 |
| 1．3． 水稻愈伤组织的分化能力 | 第52-53页 |
| 1．4． 继代次数对水稻愈伤组织分化能力的影响 | 第53-55页 |
| 1．5． 干燥处理对水稻愈伤组织分化能力的影响 | 第55页 |
| 1．6． 头孢霉素对胚性愈伤组织继代的影响 | 第55页 |
| 1．7． 潮霉素对胚性愈伤组织继代的影响 | 第55-56页 |
| 1．8． 头孢霉素对胚性愈伤组织分化再生的影响 | 第56页 |
| 1．9． 潮霉素对转化胚性愈伤组织分化的影响 | 第56-57页 |
| 2． 潮霉素抗性植株的获得 | 第57-60页 |
| 2．1． 基因枪介导法转基因水稻植株的获得 | 第57-58页 |
| 2．2． 农杆菌介导法转基因水稻植株的获得 | 第58-60页 |
| 3． 去除选择标记基因植物表达载体的构建及水稻转化 | 第60-62页 |
| 3．1． 双T-DNA植物表达载体的构建 | 第60页 |
| 3．2． 双T-DNA载体转化水稻植株的获得 | 第60-61页 |
| 3．3． 转基因T0植株目的基因与选择标记基因共转化频率 | 第61页 |
| 3．4． 转化植株后代目的基因与选择标记基因的分离结果 | 第61-62页 |
| 4． 转基因植株的分子鉴定 | 第62-73页 |
| 4．1． 转基因植株的PCR分析 | 第62-69页 |
| 4．2． 转基因植株的PCR-Southern blotting分析 | 第69-71页 |
| 4．3． 转基因植株基因组Southem blotting检测 | 第71-73页 |
| 5． 转基因的遗传稳定性分析 | 第73-75页 |
| 5．1． 转基因植株的潮霉素抗性分析 | 第73-74页 |
| 5．2． 抗虫基因与潮霉素抗性基因的遗传一致性分析 | 第74-75页 |
| 6． 目的基因表达研究 | 第75-76页 |
| 6．1． 转sck基因水稻的豇豆胰蛋白酶抑制剂活性测定结果 | 第75页 |
| 6．2． Western blotting分析 | 第75页 |
| 6．3． 植物凝集素活性检测 | 第75-76页 |
| 7． 核基质结合区（MARs）对转基因表达的影响 | 第76-77页 |
| 8． 抗性基因的聚合 | 第77-79页 |
| 9． 转基因水稻材料的田间农艺性状 | 第79-81页 |
| 9．1． 转gna恢复系SH527的田间农艺 | 第79页 |
| 9．2． 转sck广亲合系W2008的农艺性状 | 第79-80页 |
| 9．3． 其它转基因植株的一些农艺性状 | 第80-81页 |
| 10． 转基因水稻的抗虫性 | 第81-83页 |
| 10．1． 转基因水稻的室内抗虫性测定结果 | 第81-82页 |
| 10．2． 转基因植株的田间抗虫性 | 第82-83页 |
| 11． 转基因杂交稻的配制 | 第83-87页 |
| 11．1． 转基因杂交稻亲本抗虫基因的纯合 | 第83-84页 |
| 11．2． 转抗虫基因杂交稻的农艺性状 | 第84-85页 |
| 11．3． 杂交稻外源基因的分子检测 | 第85-86页 |
| 11．4． 外源基因在杂交稻中的表达 | 第86-87页 |
| Ⅳ． 讨论 | 第87-94页 |
| 1． 水稻遗传转化受体系统 | 第87-88页 |
| 2． 水稻遗传转化方法 | 第88-89页 |
| 3． 外源基因在转基因植株中的遗传稳定性 | 第89页 |
| 4． 稳定和提高外源基因的表达 | 第89-90页 |
| 5． 克服转基因中选择标记基因的安全隐患 | 第90-91页 |
| 6． 转基因在杂交稻育种中的运用 | 第91-94页 |
| Ⅴ． 结论 | 第94-95页 |
| Ⅵ． 参考文献 | 第95-108页 |
| Ⅶ． 附录 | 第108-122页 |
| 附表1： 水稻转基因一览表 | 第108-116页 |
| 附表2： 转基因水稻的农艺性状 | 第116-120页 |
| 附表3： 含sck转基因水稻的豇豆胰蛋白酶抑制剂（CpTI）含量 | 第120-121页 |
| 附图1： 双T-DNA植物载体pCDMARUSCKP-HPT的构建过程 | 第121-122页 |
| 在学期间发表论文 | 第122-123页 |
| 致谢 | 第123页 |
