| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-29页 |
| 1.多糖 | 第14-24页 |
| ·多糖概述 | 第14-15页 |
| ·多糖的提取 | 第15-18页 |
| ·溶剂提取法 | 第16页 |
| ·酶法 | 第16页 |
| ·超滤法 | 第16页 |
| ·超声强化提取法 | 第16-17页 |
| ·微波辅助提取法 | 第17页 |
| ·超临界流体萃取法 | 第17-18页 |
| ·多糖的分离与纯化 | 第18页 |
| ·多糖的结构及结构分析 | 第18-19页 |
| ·多糖的生物活性 | 第19-23页 |
| ·免疫调节作用 | 第20页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第20-21页 |
| ·抗病毒活性 | 第21页 |
| ·抗衰老活性 | 第21页 |
| ·抗凝血活性 | 第21页 |
| ·抗辐射作用 | 第21-22页 |
| ·抗炎活性 | 第22页 |
| ·降血糖、降血脂作用 | 第22-23页 |
| ·其它作用 | 第23页 |
| ·多糖研究中存在的问题 | 第23页 |
| ·多糖的应用及发展前景 | 第23-24页 |
| 2.防风 | 第24-28页 |
| ·防风概述 | 第24-25页 |
| ·防风的化学成分 | 第25-26页 |
| ·挥发油 | 第25页 |
| ·色原酮 | 第25页 |
| ·香豆素 | 第25-26页 |
| ·聚乙炔 | 第26页 |
| ·有机酸 | 第26页 |
| ·无机元素 | 第26页 |
| ·多糖 | 第26页 |
| ·其它 | 第26页 |
| ·防风的药理作用及临床应用 | 第26-27页 |
| ·防风多糖的生理活性 | 第27-28页 |
| ·增强免疫的功能 | 第27页 |
| ·抗肿瘤作用 | 第27-28页 |
| 3.本课题的立题背景、研究意义及主要研究内容 | 第28-29页 |
| ·立题背景和研究意义 | 第28页 |
| ·主要研究内容 | 第28-29页 |
| 第2章 防风多糖提取工艺的研究 | 第29-41页 |
| 1.材料和仪器 | 第29页 |
| ·材料与试剂 | 第29页 |
| ·主要仪器 | 第29页 |
| 2.实验方法 | 第29-32页 |
| ·原料的预处理 | 第29页 |
| ·防风多糖提取方法的优化 | 第29-30页 |
| ·传统热水浸提法 | 第29-30页 |
| ·超声波强化提取法 | 第30页 |
| ·微波辅助提取法 | 第30页 |
| ·防风多糖提取率的计算 | 第30-32页 |
| ·葡萄糖标准溶液的配制 | 第31页 |
| ·苯酚试剂的配制 | 第31页 |
| ·标准曲线的制作 | 第31-32页 |
| ·样品提取率的测定 | 第32页 |
| 3.结果与分析 | 第32-40页 |
| ·单因素分组实验结果与分析 | 第32-35页 |
| ·传统热水浸提法单因素分组实验结果与分析 | 第32-34页 |
| ·超声强化和微波辅助提取法单因素分组实验结果与分析 | 第34-35页 |
| ·单因素实验方差分析 | 第35-36页 |
| ·传统热水浸提法单因素实验方差分析 | 第36页 |
| ·超声强化提取法单因素实验方差分析 | 第36页 |
| ·微波辅助提取法单因素实验方差分析 | 第36页 |
| ·正交实验结果与分析 | 第36-40页 |
| ·传统热水浸提法正交实验结果与分析 | 第37页 |
| ·超声强化提取法正交实验结果与分析 | 第37-38页 |
| ·微波辅助提取法正交实验结果与分析 | 第38-40页 |
| ·不同提取方法效果对比 | 第40页 |
| 4.结论 | 第40-41页 |
| 第3章 防风多糖的分离纯化及理化性质分析 | 第41-49页 |
| 1.材料和仪器 | 第41-42页 |
| ·材料与试剂 | 第41页 |
| ·主要仪器 | 第41-42页 |
| 2.实验方法 | 第42-44页 |
| ·防风多糖的脱色 | 第42页 |
| ·防风多糖的除蛋白 | 第42页 |
| ·防风多糖的纯化 | 第42-43页 |
| ·DEAE-52纤维素柱层析 | 第42-43页 |
| ·Sephadex G-200柱层析 | 第43页 |
| ·防风多糖的纯度鉴定 | 第43页 |
| ·紫外光谱分析 | 第43页 |
| ·凝胶柱层析 | 第43页 |
| ·比旋光度测定 | 第43页 |
| ·防风多糖的理化性质分析 | 第43页 |
| ·防风多糖的多糖及糖醛酸含量测定 | 第43-44页 |
| ·多糖含量测定 | 第43-44页 |
| ·糖醛酸含量测定 | 第44页 |
| ·防风多糖的相对分子量测定 | 第44页 |
| 3.结果与分析 | 第44-48页 |
| ·防风多糖的脱色、除蛋白结果 | 第44页 |
| ·防风多糖(SPS)的DEAE-52柱层析结果 | 第44-45页 |
| ·Sephadex G-200柱层析结果 | 第45-46页 |
| ·SPS-Ⅰ和SPS-Ⅱ的纯度鉴定结果 | 第46-47页 |
| ·紫外光谱扫描结果 | 第46页 |
| ·凝胶柱层析结果 | 第46页 |
| ·比旋光度测定结果 | 第46-47页 |
| ·SPS-Ⅰ和SPS-Ⅱ的理化性质分析结果 | 第47-48页 |
| ·多糖及糖醛酸含量测定结果 | 第48页 |
| ·相对分子量测定结果 | 第48页 |
| 4.结论 | 第48-49页 |
| 第4章 防风多糖的硫酸酯化及结构分析 | 第49-60页 |
| 1.材料和仪器 | 第49页 |
| ·材料与试剂 | 第49页 |
| ·主要仪器 | 第49页 |
| 2.实验方法 | 第49-52页 |
| ·硫酸酯化防风多糖(S-SPS)的制备 | 第50页 |
| ·S-SPS的定性判断 | 第50页 |
| ·S-SPS中硫酸基含量及取代度的测定 | 第50-51页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第50页 |
| ·换算因子(f)的测定 | 第50页 |
| ·样品中SO_4~(2-)含量的测定 | 第50-51页 |
| ·样品中硫酸基取代度(DS)的计算 | 第51页 |
| ·防风多糖的单糖组成分析 | 第51页 |
| ·单糖衍生物的制备 | 第51页 |
| ·多糖样品的水解和衍生化 | 第51页 |
| ·气相色谱(GC)分析 | 第51页 |
| ·防风多糖的结构分析 | 第51-52页 |
| ·红外光谱(IR)分析 | 第52页 |
| ·三氟乙酸部分(TFA)酸水解 | 第52页 |
| ·高碘酸氧化和Smith降解 | 第52页 |
| 3.结果与分析 | 第52-58页 |
| ·防风多糖硫酸酯化结果 | 第52-53页 |
| ·S-SPS的光谱学鉴定结果 | 第53页 |
| ·防风多糖的单糖组成分析结果 | 第53-55页 |
| ·防风多糖的红外光谱分析结果 | 第55-56页 |
| ·防风多糖部分酸水解结果与分析 | 第56-57页 |
| ·防风多糖高碘酸氧化和Smith降解结果与分析 | 第57-58页 |
| 4.结论 | 第58-60页 |
| 第5章 防风多糖的生物活性研究 | 第60-68页 |
| 1.材料和仪器 | 第60页 |
| ·材料与试剂 | 第60页 |
| ·主要仪器 | 第60页 |
| 2.实验方法 | 第60-64页 |
| ·防风多糖的抗氧化实验 | 第61-63页 |
| ·总还原力测定 | 第61页 |
| ·清除超氧阴离子自由基(O_2~-·)能力测定 | 第61页 |
| ·清除羟自由基(·OH)能力测定 | 第61-62页 |
| ·清除1,1-二苯基-2-苦苯肼自由基(DPPH·)能力测定 | 第62页 |
| ·对Fe~(2+)诱发的脂质过氧化反应的抑制作用 | 第62-63页 |
| ·防风多糖的抑菌实验 | 第63-64页 |
| ·培养基的配制 | 第63页 |
| ·菌种活化及菌悬液的制备 | 第63页 |
| ·防风多糖溶液的配制 | 第63页 |
| ·防风多糖的抑菌作用测定 | 第63页 |
| ·最小抑菌浓度(MIC)的测定 | 第63-64页 |
| 3.结果与分析 | 第64-67页 |
| ·防风多糖的抗氧化实验结果及分析 | 第64-66页 |
| ·还原力测定结果及分析 | 第64页 |
| ·对超氧阴离子自由基(O_2~-·)的清除作用 | 第64-65页 |
| ·对羟自由基(·OH)的清除作用 | 第65页 |
| ·对1,1-二苯基-2-苦苯肼自由基(DPPH·)的清除作用 | 第65-66页 |
| ·对Fe~(2+)诱发的脂质过氧化反应的抑制作用 | 第66页 |
| ·防风多糖的抑菌实验结果及分析 | 第66-67页 |
| ·防风多糖对四种常见食品微生物的抑制作用 | 第66页 |
| ·防风多糖对枯草芽孢杆菌的最小抑菌浓度(MIC) | 第66-67页 |
| 4.结论 | 第67-68页 |
| 第6章 总结及展望 | 第68-70页 |
| 参考文献 | 第70-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第77页 |
