大葱(Allium fistulosum L.)组织培养及其遗传转化研究
中文摘要 | 第1-12页 |
英文摘要 | 第12-14页 |
1 引言 | 第14-33页 |
·根癌农杆菌 | 第14-19页 |
·农杆菌的组成 | 第14-15页 |
·T-DNA 导入植物基因组的机理 | 第15-18页 |
·农杆菌介导的遗传转化特点 | 第18-19页 |
·影响农杆菌转化单子叶植物的因素 | 第19-23页 |
·受体 | 第19-20页 |
·菌株和质粒载体 | 第20-21页 |
·Vir 基因的诱导 | 第21页 |
·菌液浓度 | 第21页 |
·悬浮培养基 | 第21-22页 |
·转化方式 | 第22页 |
·植物培养基和外植体培养条件的影响 | 第22页 |
·共培养条件 | 第22-23页 |
·农杆菌介导单子叶植物的遗传转化 | 第23-30页 |
·农杆菌介导禾本科植物主要粮食农作物的遗传转化 | 第23-25页 |
·农杆菌介导的禾本科其余植物的遗传转化 | 第25-27页 |
·农杆菌介导的其余单子叶植物的遗传转化 | 第27-30页 |
·存在的问题与展望 | 第30-32页 |
·转化机理 | 第30-31页 |
·转化范围 | 第31页 |
·转化策略 | 第31页 |
·转基因植物安全性问题 | 第31-32页 |
·本研究的目的意义及国内外研究进展 | 第32-33页 |
2 材料与方法 | 第33-47页 |
·材料 | 第33-35页 |
·植物材料 | 第33页 |
·菌株 | 第33页 |
·试剂 | 第33页 |
·培养基 | 第33-35页 |
·试验所用仪器 | 第35页 |
·方法 | 第35-45页 |
·愈伤组织的诱导及再生体系的建立 | 第35-36页 |
·大葱遗传转化系统的建立 | 第36-37页 |
·农杆菌介导大葱转化体系的建立 | 第37-38页 |
·遗传转化的主要影响因素 | 第38-39页 |
·组织化学法检测报告基因gus 的表达 | 第39页 |
·转基因植株的分子生物学鉴定 | 第39-45页 |
·几丁质酶活性测定 | 第45页 |
·潮霉素对大葱的影响 | 第45-47页 |
·潮霉素对大葱组培幼苗生长的影响 | 第45页 |
·潮霉素对愈伤分化的影响 | 第45-46页 |
·潮霉素对愈伤组织可溶性蛋白含量的影响 | 第46-47页 |
3 结果与分析 | 第47-68页 |
·愈伤组织的诱导及再生体系的建立结果 | 第47-52页 |
·不同外植体愈伤诱导 | 第47-48页 |
·琼脂浓度对愈伤组织玻璃化的影响 | 第48页 |
·培养条件对愈伤组织玻璃化的影响 | 第48-50页 |
·培养条件对愈伤组织褐化的影响 | 第50-51页 |
·分化培养基对愈伤组织分化的影响 | 第51-52页 |
·愈伤组织在生根培养基上的生根情况 | 第52页 |
·试管苗的驯化移栽 | 第52页 |
·大葱遗传转化系统的建立 | 第52-66页 |
·抗生素敏感浓度的确定 | 第52-54页 |
·农杆菌介导大葱遗传转化中的几个参数优化 | 第54-64页 |
·gus 基因表达的组织化学染色 | 第64-65页 |
·PCR 检测结果 | 第65页 |
·几丁质酶活性测定 | 第65-66页 |
·潮霉素对大葱的抑制作用 | 第66-68页 |
·潮霉素对大葱组培幼苗生长的影响 | 第66页 |
·潮霉素对愈伤分化的影响 | 第66-67页 |
·潮霉素对愈伤组织可溶性蛋白含量的影响 | 第67-68页 |
4. 讨论 | 第68-73页 |
·建立大葱再生体系时的问题 | 第68-70页 |
·外植体与愈伤率 | 第68页 |
·外植体与基因转化 | 第68-70页 |
·农杆菌的去除对转化率的影响 | 第70-71页 |
·筛选 | 第71页 |
·转化条件的影响 | 第71-73页 |
·共培养的影响 | 第71-72页 |
·农杆菌的侵染时间以及菌液浓度 | 第72-73页 |
5 结论 | 第73-74页 |
·章丘大葱再生体系的建立 | 第73页 |
·农杆菌介导的大葱遗传转化系统的建立 | 第73页 |
·选择剂浓度的确定 | 第73页 |
·农杆菌侵染大葱愈伤组织进行基因转化的适宜条件 | 第73页 |
·组织化学以及分子检测 | 第73页 |
·潮霉素对大葱的抑制生理作用 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-84页 |
致谢 | 第84-85页 |
图版说明 | 第85-87页 |
攻读学位期间发表论文情况 | 第87页 |