| 摘要 | 第1-4页 |
| ABSTRACT | 第4-7页 |
| 第一章 绪论 | 第7-26页 |
| ·引言 | 第7页 |
| ·胞外障碍及对策 | 第7-11页 |
| ·胞内障碍及对策 | 第11-16页 |
| ·细胞摄入 | 第11-13页 |
| ·内涵体和溶酶体逃脱 | 第13-15页 |
| ·质粒DNA 进核的障碍 | 第15-16页 |
| ·基因与载体解离障碍 | 第16-24页 |
| ·阳离子载体改性 | 第18-22页 |
| ·基于非静电相互作用转基因载体的尝试 | 第22-24页 |
| ·裂皱菌多糖（SPG）转基因载体 | 第22-23页 |
| ·大环结构糖类转基因载体 | 第23页 |
| ·PVDT基聚合物转基因载体 | 第23-24页 |
| ·本论文拟开展的工作 | 第24-26页 |
| 第二章 PVDT基聚合物/pDNA复合物的制备与表征 | 第26-38页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·实验部分 | 第26-30页 |
| ·实验药品 | 第26-27页 |
| ·实验仪器 | 第27页 |
| ·PVDT基转基因载体的制备 | 第27-28页 |
| ·合成均聚PVDT | 第27页 |
| ·合成均聚PVP | 第27页 |
| ·合成PVDT－PVP共聚物 | 第27-28页 |
| ·PVDT基转基因载体的表征 | 第28页 |
| ·核磁共振氢谱表征（~1H NMR） | 第28页 |
| ·紫外分光光度计定量PVDT基聚合物浓度 | 第28页 |
| ·菌体的培养与质粒的提取 | 第28-30页 |
| ·液体培养基（LB）配制 | 第28-29页 |
| ·菌体培养（摇菌） | 第29页 |
| ·质粒提取 | 第29-30页 |
| ·PVDT基聚合物/pDNA复合物的制备 | 第30页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳 | 第30页 |
| ·Zeta电位和粒子尺寸测量 | 第30页 |
| ·结果与讨论 | 第30-37页 |
| ·核磁共振氢谱（1H NMR）确定共聚物共聚比 | 第30-32页 |
| ·未知PVDT基聚合物浓度定量 | 第32-34页 |
| ·凝胶电泳考察PVDT基载体与pDNA的复合 | 第34-36页 |
| ·PVDT基聚合物/pDNA复合物的表面电荷及粒子尺寸 | 第36-37页 |
| ·结论 | 第37-38页 |
| 第三章 PVDT基聚合物/pDNA复合物的体外细胞转染机理研究 | 第38-56页 |
| ·引言 | 第38页 |
| ·实验部分 | 第38-45页 |
| ·试剂耗材 | 第38-39页 |
| ·实验仪器 | 第39-40页 |
| ·COS-1 细胞的培养 | 第40-41页 |
| ·培养液的制备 | 第40-41页 |
| ·细胞培养 | 第41页 |
| ·体外转染COS-1 细胞 | 第41-42页 |
| ·荧光素酶（Luciferase）活性的测定 | 第42页 |
| ·BCA法测总蛋白 | 第42-43页 |
| ·MTT法考察载体的细胞毒性 | 第43页 |
| ·流式细胞仪和荧光显微镜观察 | 第43-44页 |
| ·荧光报告基因表达 | 第44页 |
| ·药物抑制实验 | 第44-45页 |
| ·结果与讨论 | 第45-55页 |
| ·PVDT基聚合物/pDNA复合物的细胞吸收 | 第45-48页 |
| ·药物和温度抑制实验 | 第48-52页 |
| ·PVDT基聚合物控制的基因转染的动力学研究 | 第52-55页 |
| ·结论 | 第55-56页 |
| 第四章 全文结论 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-62页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
