| 英文略缩词 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9页 |
| 第一部分 | 第10-55页 |
| 引言 | 第12-14页 |
| 材料和方法 | 第14-29页 |
| 一、材料 | 第14-17页 |
| 1 血清样本 | 第14页 |
| 2 主要试剂 | 第14-17页 |
| 3 主要耗材和仪器 | 第17页 |
| 二、方法 | 第17-29页 |
| 1 细胞培养 | 第18-19页 |
| 2 蛋白质提取与分析 | 第19-21页 |
| 3 核酸提取与分析 | 第21-25页 |
| 4 重组蛋白(rSTMN)的表达纯化 | 第25-26页 |
| 5 小鼠高亲和力单抗设计,制备和筛选 | 第26-27页 |
| 6 高通量定量stathmin-1的AlphaLISA检测体系建立 | 第27-28页 |
| 7 统计学分析 | 第28-29页 |
| 结果 | 第29-46页 |
| 一、人stathmin-1重组蛋白的表达、纯化和生物素标记 | 第29页 |
| 二、抗人stathmin-1单克隆抗体的制备和纯化 | 第29-33页 |
| 1 多肽抗体筛选 | 第29-31页 |
| 2 高亲和力单抗1B16-B、3P9的可变区序列测定 | 第31-33页 |
| 三、Stathmin-1高通量定量AlphaLISA检测体系的建立 | 第33-37页 |
| 1 测定和绘制标准曲线 | 第33-34页 |
| 2 AlphaLISA检测体系性能分析 | 第34-35页 |
| 3 与商品化ELISA试剂盒检测性能和结果的比较 | 第35-37页 |
| 四、食管癌等肿瘤患者血清stathmin-1水平的比较和意义 | 第37-46页 |
| 1 食管鳞癌患者血清stathmin-1检测 | 第37-38页 |
| 2 食管癌患者血清stathmin-1水平与肿瘤分期关系 | 第38-39页 |
| 3 食管癌患者血清stathmin-1水平与淋巴结转移关系 | 第39-41页 |
| 4 Stathmin-1在多种肿瘤患者血清中高表达 | 第41-43页 |
| 5 Stathmin-1可能为潜在的鳞癌特异标志分子 | 第43-45页 |
| 6 Stathmin-1与Cyfra21-1,SCC-Ag联合检测可提高ESCC临床诊断效率 | 第45-46页 |
| 讨论 | 第46-50页 |
| 小结 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-55页 |
| 第二部分 | 第55-73页 |
| 引言 | 第57-59页 |
| 材料与方法 | 第59-61页 |
| 一、材料 | 第59页 |
| 1 主要材料 | 第59页 |
| 2 主要试剂 | 第59页 |
| 二、方法 | 第59-61页 |
| 1 细胞培养,外泌体提取 | 第59-60页 |
| 2 蛋白提取及Western blot分析 | 第60页 |
| 3 透射电镜分析 | 第60页 |
| 4 外泌体的粒度分布分析 | 第60页 |
| 5 统计学处理 | 第60-61页 |
| 结果 | 第61-65页 |
| 一、外泌体提取与鉴定 | 第61-62页 |
| 1 食管癌细胞培养上清中存在典型外泌体囊泡样结构 | 第61页 |
| 2 外泌体粒度分析 | 第61-62页 |
| 二、外泌体的生物分子和大肠癌和食管癌相关蛋白检测 | 第62-65页 |
| 讨论 | 第65-68页 |
| 小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-73页 |
| 基金资助 | 第73-74页 |
| 文献综述 | 第74-85页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 个人简历 | 第86-89页 |
| 附件 | 第89-91页 |
