| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 1 前言 | 第12页 |
| 2 文献综述:影响骨骼肌质量的信号通路及系统 | 第12-19页 |
| 2.1 骨骼肌合成信号通路 | 第13-14页 |
| 2.1.1 IGF1/PI3K/Akt/mTOR通路 | 第13页 |
| 2.1.2 IGF1/PI3K/Akt/GSK-3β信号通路 | 第13-14页 |
| 2.2 影响骨骼肌萎缩的信号通路 | 第14-19页 |
| 2.2.1 FoxO/MuRF1/MAFbx信号通路 | 第14-15页 |
| 2.2.2 GDF8/ActivinⅡB信号 | 第15-17页 |
| 2.2.3 TRAF6/MCL1/Bcl-2与骨骼肌萎缩 | 第17页 |
| 2.2.4 TWEAK-Fn14信号通路 | 第17页 |
| 2.2.5 自噬系统与骨骼肌萎缩 | 第17-19页 |
| 3 实验材料及方法 | 第19-30页 |
| 3.1 主要实验仪器设备及耗材 | 第19-21页 |
| 3.1.1 主要仪器设备 | 第19-20页 |
| 3.1.2 主要试剂和耗材 | 第20-21页 |
| 3.2 实验动物的选择及实验分组、干预 | 第21-22页 |
| 3.3 取材与保存 | 第22页 |
| 3.4 切片及染色 | 第22-23页 |
| 3.4.1 石蜡切片 | 第22页 |
| 3.4.2 冰冻切片 | 第22-23页 |
| 3.4.3 HE染色 | 第23页 |
| 3.5 荧光定量PCR | 第23-28页 |
| 3.5.1 提取组织中的RNA | 第23页 |
| 3.5.2 RNA浓度及纯度测试 | 第23页 |
| 3.5.3 逆转录反应 | 第23-24页 |
| 3.5.4 扩增引物 | 第24页 |
| 3.5.5 荧光定量PCR | 第24-25页 |
| 3.5.6 PCR结果数据处理 | 第25-28页 |
| 3.6 WesternBlotting | 第28-30页 |
| 3.6.1 组织蛋白提取及定量蛋白质 | 第28页 |
| 3.6.2 WB上样样品准备 | 第28页 |
| 3.6.3 SDS-PAGE电泳 | 第28-29页 |
| 3.6.4 湿式电转膜 | 第29页 |
| 3.6.5 免疫反应 | 第29-30页 |
| 3.6.6 拍照保存及计算 | 第30页 |
| 3.7 统计学处理 | 第30页 |
| 4 结果 | 第30-38页 |
| 4.1 各组大鼠体重、骨骼肌质量及骨骼肌细胞面积结果 | 第30-32页 |
| 4.1.1 12周耐力运动和12周HIIT后各组大鼠体重及骨骼肌质量结果 | 第30-31页 |
| 4.1.2 骨骼肌HE染色及细胞面积结果 | 第31-32页 |
| 4.2 耐力运动和HIIT对大鼠骨骼肌分解信号通路相关基因及蛋白的影响 | 第32-38页 |
| 4.2.1 耐力运动和HIIT对骨骼肌中FoxO1、FoxO3、MuRF1、MAFbx基因表达影响的结果 | 第32-34页 |
| 4.2.2 耐力运动和HIIT对GDF8、ActivinⅡB基因表达影响的结果 | 第34-35页 |
| 4.2.3 耐力运动和HIIT对FoxO1、FoxO3、P-FoxO、MuRF1、MAFbx蛋白表达影响的结果 | 第35-37页 |
| 4.2.4 耐力运动和HIIT对GDF8、ActivinⅡB蛋白表达影响的结果 | 第37-38页 |
| 5 讨论 | 第38-43页 |
| 5.1 耐力运动和HIIT对大鼠骨骼肌质量的影响 | 第38-39页 |
| 5.2 耐力运动和HIIT对FoxOs/MAFbx/MuRF1信号通路的影响 | 第39-41页 |
| 5.3 耐力运动和HIIT对GDF8/ActivinⅡB信号的影响 | 第41-43页 |
| 6 结论 | 第43-44页 |
| 7 致谢 | 第44-45页 |
| 8 参考文献 | 第45-52页 |
| 9 个人简历及在校期间发表的论文和参与的课题 | 第52页 |
