| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩略语 | 第11-15页 |
| 第一部分 蟾蜍灵诱导胃癌细胞自噬及其机理研究 | 第15-39页 |
| 1 前言 | 第15-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-21页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第18页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第18-19页 |
| 2.1.3 细胞系 | 第19页 |
| 2.1.4 质粒 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第19页 |
| 2.2.2 MTT法进行细胞活力检测 | 第19页 |
| 2.2.3 流式细胞凋亡检测 | 第19页 |
| 2.2.4 荧光显微镜 | 第19-20页 |
| 2.2.5 电镜 | 第20页 |
| 2.2.6 Westernblot检测蛋白水平 | 第20页 |
| 2.2.7 统计学分析 | 第20-21页 |
| 3 实验结果 | 第21-32页 |
| 3.1 蟾蜍灵抑制MGC803、BGC823、SGC7901细胞增殖 | 第21页 |
| 3.2 蟾蜍灵诱导MGC803、BGC823、SGC7901细胞凋亡 | 第21-23页 |
| 3.2.1 蟾蜍灵作用胃癌细胞后流式检测凋亡 | 第21-22页 |
| 3.2.2 蟾蜍灵作用胃癌细胞后PARP裂解增加 | 第22-23页 |
| 3.3 蟾蜍灵诱导胃癌细胞自噬 | 第23-25页 |
| 3.3.1 蟾蜍灵诱导MGC803细胞自噬荧光显微镜所见 | 第23-24页 |
| 3.3.2 蟾蜍灵诱导MGC803细胞自噬电镜所见 | 第24页 |
| 3.3.3 蟾蜍灵作用胃癌细胞后对LC3蛋白表达的影响 | 第24-25页 |
| 3.4 自噬相关蛋白在蟾蜍灵诱导胃癌细胞自噬过程中的变化 | 第25-26页 |
| 3.5 PI3K/Akt/mTOR/p70S6K信号通路及ERK1/2信号对自噬的调控 | 第26-27页 |
| 3.6 ERK1/2抑制剂PD98059对蟾蜍灵诱导胃癌MGC803细胞自噬的影响 | 第27-28页 |
| 3.7 Cbl-b对蟾蜍灵诱导胃癌细胞MGC803自噬的影响 | 第28-30页 |
| 3.7.1 蟾蜍灵作用MGC803细胞后Cbl-b蛋白表达情况 | 第28页 |
| 3.7.2 蟾蜍灵作用Cbl-b敲减的MGC803细胞LC3的表达水平变化情况 | 第28-29页 |
| 3.7.3 蟾蜍灵作用Cbl-b敲减的MGC803细胞mTOR及ERK表达变化… | 第29-30页 |
| 3.8 应用自噬抑制剂氯奎后对细胞增殖的影响 | 第30页 |
| 3.9 应用自噬抑制剂氯奎后对细胞凋亡的影响 | 第30-32页 |
| 4 讨论 | 第32-38页 |
| 5 结论 | 第38-39页 |
| 第二部分 康艾抑制胃癌细胞增殖及其机理研究 | 第39-52页 |
| 1 前言 | 第39-41页 |
| 2 材料与方法 | 第41-44页 |
| 2.1 主要试剂和仪器 | 第41-42页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第41页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第41-42页 |
| 2.2 实验方法 | 第42-44页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第42页 |
| 2.2.2 MTT法进行细胞活力检测 | 第42页 |
| 2.2.3 流式细胞周期检测 | 第42页 |
| 2.2.4 Realmtime-PCR | 第42-43页 |
| 2.2.5 Westernblot检测蛋白水平 | 第43页 |
| 2.2.6 统计学分析 | 第43-44页 |
| 3 实验结果 | 第44-49页 |
| 3.1 康艾抑制胃癌细胞增殖 | 第44页 |
| 3.2 康艾对胃癌细胞周期的影响 | 第44-46页 |
| 3.3 康艾抑制STAT3 | 第46页 |
| 3.4 康艾抑制IL-6的表达 | 第46-47页 |
| 3.5 康艾与IL-6联用后对细胞增殖的影响 | 第47-48页 |
| 3.6 康艾通过抑制IL-6抑制STAT3活化 | 第48-49页 |
| 4 讨论 | 第49-51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 本研究创新性的自我评价 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
| 文献综述 | 第58-65页 |
| 参考文献 | 第61-65页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 个人简介 | 第67页 |
