| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 主要符号表 | 第17-18页 |
| 主要缩写表 | 第18-19页 |
| 1 水环境光化学行为的研究进展及本论文选题依据 | 第19-48页 |
| 1.1 水环境光化学行为 | 第19-34页 |
| 1.1.1 光化学基本概念与原理 | 第19-23页 |
| 1.1.2 水体对光的吸收和衰减 | 第23-25页 |
| 1.1.3 水环境因子对污染物光解的影响 | 第25-27页 |
| 1.1.4 污染物光解动力学行为 | 第27-34页 |
| 1.2 抗病毒药物的环境水平和环境行为 | 第34-45页 |
| 1.2.1 抗病毒药物简介 | 第34-38页 |
| 1.2.2 抗病毒药物的环境水平和生态效应 | 第38-41页 |
| 1.2.3 抗病毒药物的环境转化行为 | 第41-45页 |
| 1.3 本论文选题依据、研究目的、内容和技术路线 | 第45-48页 |
| 1.3.1 选题依据 | 第45-46页 |
| 1.3.2 研究目的和内容 | 第46页 |
| 1.3.3 技术路线 | 第46-48页 |
| 2 水中溶解性物质对抗病毒药物光解动力学的影响 | 第48-66页 |
| 2.1 引言 | 第48页 |
| 2.2 材料与方法 | 第48-54页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第48-50页 |
| 2.2.2 稳态光解实验 | 第50-53页 |
| 2.2.3 分析方法 | 第53-54页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第54-65页 |
| 2.3.1 三种抗病毒药物在纯水中的光解 | 第54-56页 |
| 2.3.2 齐多夫定在纯水中的光解产物鉴定 | 第56-58页 |
| 2.3.3 三种抗病毒药物在自然水体中的光解 | 第58-65页 |
| 2.4 小结 | 第65-66页 |
| 3 DOM影响阿昔洛韦和拉米夫定光解的机理 | 第66-88页 |
| 3.1 引言 | 第66页 |
| 3.2 材料与方法 | 第66-73页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第66-67页 |
| 3.2.2 稳态光解实验和分析方法 | 第67-69页 |
| 3.2.3 光活性中间体(RIs)的测定 | 第69-70页 |
| 3.2.4 二级反应速率常数的测定 | 第70-73页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第73-86页 |
| 3.3.1 阿昔洛韦和拉米夫定在DOM溶液中的光解 | 第73-75页 |
| 3.3.2 DOM溶液中RIs的产生 | 第75-82页 |
| 3.3.3 与RIs反应的二级速率常数 | 第82-85页 |
| 3.3.4 实验值与预测值的比较 | 第85-86页 |
| 3.4 小结 | 第86-88页 |
| 4 有机微污染物在黄河三角洲水体中的光解动力学模型 | 第88-116页 |
| 4.1 引言 | 第88-89页 |
| 4.2 材料与方法 | 第89-96页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第89-92页 |
| 4.2.2 光解动力学模型的建立 | 第92-94页 |
| 4.2.3 太阳光强的测定 | 第94-95页 |
| 4.2.4 室外光化学实验 | 第95-96页 |
| 4.2.5 建立MPK Applet | 第96页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第96-114页 |
| 4.3.1 太阳光强的变化 | 第96-100页 |
| 4.3.2 RIs(~1O_2,·OH和~3DOM*)的表观量子产量 | 第100-101页 |
| 4.3.3 RIs产生速率和光解速率常数的预测 | 第101-109页 |
| 4.3.4 预测方法的验证 | 第109-111页 |
| 4.3.5 MPK Applet | 第111-114页 |
| 4.4 小结 | 第114-116页 |
| 5 结论和建议 | 第116-119页 |
| 5.1 结论 | 第116-117页 |
| 5.2 创新点 | 第117页 |
| 5.3 展望 | 第117-119页 |
| 参考文献 | 第119-136页 |
| 作者简介 | 第136页 |
| 攻读博士学位期间科研项目及科研成果 | 第136-138页 |
| 致谢 | 第138页 |
