| 摘要 | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-24页 |
| 1 农药生产应用现状 | 第12页 |
| 2 除草剂 | 第12-15页 |
| 2.1 除草剂的应用概况 | 第12页 |
| 2.2 除草剂种类 | 第12-14页 |
| 2.2.1 生长调节类 | 第13页 |
| 2.2.2 氨基酸合成抑制剂类 | 第13页 |
| 2.2.3 类脂合成抑制剂类 | 第13页 |
| 2.2.4 幼苗生长抑制类 | 第13-14页 |
| 2.2.5 光合作用抑制剂类 | 第14页 |
| 2.2.6 细胞膜干扰剂 | 第14页 |
| 2.2.7 色素抑制剂 | 第14页 |
| 2.2.8 氨同化作用抑制剂 | 第14页 |
| 2.3 除草剂药害 | 第14-15页 |
| 2.3.1 失去绿色 | 第15页 |
| 2.3.2 局部坏死 | 第15页 |
| 2.3.3 造成落叶 | 第15页 |
| 2.3.4 叶片畸形 | 第15页 |
| 2.3.5 植株矮化 | 第15页 |
| 2.3.6 根变色、根数变少或畸形 | 第15页 |
| 3 除草剂的降解 | 第15-19页 |
| 3.1 光化学降解 | 第15-16页 |
| 3.2 化学水解 | 第16页 |
| 3.3 物理化学降解 | 第16-17页 |
| 3.4 除草剂的生物降解 | 第17-19页 |
| 3.4.1 微生物降解除草剂的代谢方式 | 第17页 |
| 3.4.2 微生物降解除草剂过程中的主要反应 | 第17-18页 |
| 3.4.3 降解除草剂微生物的分离 | 第18页 |
| 3.4.4 除草剂的微生物修复 | 第18-19页 |
| 4 除草剂二氯喹啉酸的降解 | 第19-24页 |
| 4.1 二氯喹啉酸的基本性质及其除草机理 | 第19页 |
| 4.2 二氯喹啉酸对烟草的药害现象 | 第19-20页 |
| 4.3 激素水平对烟草生长发育的影响 | 第20-21页 |
| 4.4 二氯喹啉酸的降解 | 第21-24页 |
| 4.4.1 二氯喹啉酸残留测定方法的研究 | 第21页 |
| 4.4.2 二氯喹啉酸在环境中降解的影响因子 | 第21-22页 |
| 4.4.3 与二氯喹啉酸生物降解相关的酶和中间代谢产物的研究 | 第22页 |
| 4.4.4 国内外研究现状 | 第22-23页 |
| 4.4.5 土壤残留二氯喹啉酸的修复 | 第23-24页 |
| 第二章 二氯喹啉酸危害烟草的生理机制 | 第24-37页 |
| 1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 1.1 试验材料 | 第24页 |
| 1.2 试验设计 | 第24-25页 |
| 1.2.1 二氯喹啉酸危害烟株的阈值 | 第24页 |
| 1.2.2 二氯喹琳酸对烟株生理特性的影响 | 第24页 |
| 1.2.3 二氯喹啉酸对烟草细胞超微结构的影响 | 第24-25页 |
| 1.3 试验方法 | 第25-26页 |
| 1.3.1 二氯喹啉酸危害烟株阈值的测定 | 第25页 |
| 1.3.2 保护酶活性测定 | 第25页 |
| 1.3.3 MDA及氧自由基含量的测定 | 第25页 |
| 1.3.4 叶片及根系内源激素含量的测定 | 第25页 |
| 1.3.5 叶片超微结构的观察 | 第25页 |
| 1.3.6 数据处理 | 第25-26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-35页 |
| 2.1 二氯喹啉酸危害烟苗的阈值 | 第26-27页 |
| 2.1.1 二氯喹啉酸对烟株叶宽的影响 | 第26页 |
| 2.1.2 二氯喹啉酸对烟株叶长的影响 | 第26-27页 |
| 2.1.3 二氯喹啉酸对烟株高度的影响 | 第27页 |
| 2.2 不同浓度二氯喹啉酸对烟株保护酶活性的影响 | 第27-29页 |
| 2.2.1 对SOD活性的影响 | 第27-28页 |
| 2.2.2 对POD活性的影响 | 第28页 |
| 2.2.3 对CAT活性的影响 | 第28-29页 |
| 2.3 不同浓度二氯喹啉酸对烟株中MDA和氧自由基含量的影响 | 第29-31页 |
| 2.3.1 对烟株MDA含量的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.2 二氯喹啉酸对烟株·OH含量的影响 | 第30页 |
| 2.3.3 对烟株系O_2·-含量的影响 | 第30-31页 |
| 2.4 不同浓度二氯喹啉酸对烟株内源激素含量的影响 | 第31-33页 |
| 2.4.1 对IAA含量的影响 | 第31页 |
| 2.4.2 对ZR含量的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.3 对GA_3含量的影响 | 第32页 |
| 2.4.4 对ABA含量的影响 | 第32-33页 |
| 2.5 二氯喹啉酸对烟株超微结构的影响 | 第33-35页 |
| 2.5.1 对茎尖超微组织结构的影响 | 第33-34页 |
| 2.5.2 对顶叶超微组织结构的影响 | 第34-35页 |
| 3 讨论 | 第35-36页 |
| 4 小结 | 第36-37页 |
| 第三章 二氯喹啉酸降解菌的分离及降解特性 | 第37-48页 |
| 1 材料和方法 | 第37-39页 |
| 1.1 试验材料 | 第37页 |
| 1.1.1 样品 | 第37页 |
| 1.1.2 试剂与仪器 | 第37页 |
| 1.1.3 培养基 | 第37页 |
| 1.2 二氯喹啉酸降解菌的分离、纯化和鉴定 | 第37-38页 |
| 1.2.1 富集分离 | 第37-38页 |
| 1.2.2 分离菌株的鉴定 | 第38页 |
| 1.3 降解用接种菌液的制备 | 第38页 |
| 1.4 分离菌株的其它底物降解试验 | 第38页 |
| 1.5 分离菌株的生长曲线 | 第38页 |
| 1.6 二氯喹啉酸起始浓度对菌株HN36降解二氯喹啉酸的影响 | 第38页 |
| 1.7 温度对菌株HN36降解二氯喹啉酸的影响 | 第38-39页 |
| 1.8 pH对菌株HN36降解二氯喹啉酸的影响 | 第39页 |
| 1.9 HN36菌株生长和二氯喹啉酸降解之间的关系 | 第39页 |
| 1.10 二氯喹啉酸浓度的测定 | 第39页 |
| 2 结果与分析 | 第39-46页 |
| 2.1 二氯喹啉酸降解菌的初筛 | 第39页 |
| 2.2 二氯喹啉酸降解菌的复筛 | 第39-41页 |
| 2.3 二氯喹啉酸降解菌的形态特征 | 第41页 |
| 2.4 菌株HN36的生理生化试验鉴定 | 第41页 |
| 2.5 菌株HN36的16S rDNA序列测定及系统发育分析 | 第41-43页 |
| 2.6 菌株HN36的底物降解广谱性实验 | 第43-44页 |
| 2.7 菌株HN36的生长曲线 | 第44页 |
| 2.8 二氯喹啉酸起始浓度对菌株HN36降解二氯喹啉酸的影响 | 第44页 |
| 2.9 温度对菌株HN36降解二氯喹啉酸的影响 | 第44-45页 |
| 2.10 pH对菌株HN36降解二氯喹啉酸的影响 | 第45页 |
| 2.11 菌株HN36对二氯喹啉酸的降解与菌体生长的关系 | 第45-46页 |
| 3 讨论 | 第46-47页 |
| 4 小结 | 第47-48页 |
| 第四章 菌株HN36降解二氯喹啉酸的途径 | 第48-66页 |
| 1 材料与方法 | 第48-53页 |
| 1.1 供试菌株 | 第48页 |
| 1.2 主要仪器 | 第48页 |
| 1.3 主要试剂 | 第48页 |
| 1.4 培养基 | 第48页 |
| 1.5 菌体培养 | 第48页 |
| 1.6 SDS-PAGE全细胞蛋白质电泳 | 第48-49页 |
| 1.6.1 菌体全细胞蛋白样品制备 | 第48页 |
| 1.6.2 SDS-PAGE电泳 | 第48-49页 |
| 1.7 邻苯二酚1,2—双加氧酶活性测定 | 第49页 |
| 1.8 邻苯二酚1,2—双加氧酶及邻苯二甲酸双加氧酶的基因扩增 | 第49-51页 |
| 1.8.1 菌株HN36的全基因组提取 | 第49-50页 |
| 1.8.2 菌株HN36的RNA提取 | 第50页 |
| 1.8.3 引物设计 | 第50页 |
| 1.8.4 PCR扩增 | 第50页 |
| 1.8.5 RNA反转录cDNA | 第50-51页 |
| 1.9 双向电泳 | 第51-53页 |
| 1.9.1 等点聚焦电泳(第一向) | 第51页 |
| 1.9.2 SDS-PAGE电泳(第二向) | 第51-52页 |
| 1.9.3 染色 | 第52页 |
| 1.9.4 质谱鉴定 | 第52-53页 |
| 1.10 菌株HN36降解二氯喹啉酸的产物分析 | 第53页 |
| 1.10.1 样品前处理 | 第53页 |
| 1.10.2 样品分析 | 第53页 |
| 2 结果与分析 | 第53-65页 |
| 2.1 菌株HN36的全蛋白质SDS-PAGE电泳分析 | 第53-54页 |
| 2.2 双向电泳研究二氯喹啉酸降解的相关蛋白 | 第54-58页 |
| 2.2.1 双向电泳图谱 | 第54页 |
| 2.2.2 质谱鉴定 | 第54-55页 |
| 2.2.3 蛋白质的分析 | 第55-58页 |
| 2.3 邻苯二酚1,2—双加氧酶酶活分析 | 第58页 |
| 2.4 邻苯二酚1,2—双加氧酶的基因扩增 | 第58-61页 |
| 2.5 邻苯二酚1,2—双加氧酶基因的RT-PCR | 第61页 |
| 2.6 邻苯二甲酸双加氧酶基因的扩增 | 第61-62页 |
| 2.7 HN36降解二氯喹啉酸的中间代谢产物分析 | 第62-65页 |
| 2.7.1 样品本底 | 第62页 |
| 2.7.2 衍生化前样品结果 | 第62-64页 |
| 2.7.3 衍生化后结果 | 第64-65页 |
| 3 讨论 | 第65页 |
| 4 小结 | 第65-66页 |
| 第五章 降解菌HN36对二氯喹啉酸危害烟草的修复 | 第66-101页 |
| 1 材料与方法 | 第66-68页 |
| 1.1 试验材料 | 第66页 |
| 1.2 试验设计 | 第66-67页 |
| 1.2.1 降解菌HN36对土壤中二氯喹啉酸的降解及对土壤酶活性的影响 | 第66页 |
| 1.2.2 降解菌HN36对二氯喹啉酸残留土壤烟草生理特性的影响 | 第66-67页 |
| 1.2.3 降解菌HN36对烟株组织形态及超微结构的影响 | 第67页 |
| 1.2.4 降解菌HN36对烟株农艺性状及烟叶化学成分的影响 | 第67页 |
| 1.3 试验方法 | 第67-68页 |
| 1.3.1 降解菌HN36菌液制备 | 第67页 |
| 1.3.2 土壤中二氯喹啉酸浓度的测定 | 第67页 |
| 1.3.3 根际土壤酶活性测定 | 第67页 |
| 1.3.4 氧自由基含量测定 | 第67页 |
| 1.3.5 保护酶活性测定 | 第67-68页 |
| 1.3.6 丙二醛含量、抗氧化率及伤害率测定 | 第68页 |
| 1.3.7 根系活力测定 | 第68页 |
| 1.3.8 氨基酸及还原型谷胱甘肽含量的测定 | 第68页 |
| 1.3.9 组织结构及超微结构观察 | 第68页 |
| 2 结果与分析 | 第68-97页 |
| 2.1 降解菌HN36对土壤中二氯喹啉酸的降解 | 第68-69页 |
| 2.1.1 不同接种量对土壤中二氯喹啉酸降解效果的影响 | 第68-69页 |
| 2.1.2 二氯喹啉酸初始浓度对HN36降解效果的影响 | 第69页 |
| 2.2 降解菌HN36对二氯喹啉酸胁迫土壤中酶活性的影响 | 第69-74页 |
| 2.2.1 不同接种量对二氯喹啉酸胁迫土壤中酶活性的影响 | 第69-72页 |
| 2.2.2 降解菌HN36对不同浓度二氯喹啉酸胁迫土壤酶活性的影响 | 第72-74页 |
| 2.3 降解菌HN36对二氯喹啉酸残留土壤烟株生理特性的影响 | 第74-85页 |
| 2.3.1 不同量降解菌HN36对二氯喹啉酸残留土壤烟株生理特性的影响 | 第74-80页 |
| 2.3.2 降解菌HN36对不同浓度二氯喹啉酸土壤烟株生理特性的影响 | 第80-85页 |
| 2.4 降解菌HN36对烟株农艺性状的影响 | 第85-89页 |
| 2.4.1 不同量降解菌HN36对二氯喹啉酸胁迫下烟株农艺性状的影响 | 第85-87页 |
| 2.4.2 降解菌HN36对不同浓度二氯喹啉酸胁迫下烟株农艺性状的影响 | 第87-89页 |
| 2.5 降解菌HN36对烟株组织结构的影响 | 第89-94页 |
| 2.5.1 对顶叶组织结构的影响 | 第89-91页 |
| 2.5.2 对中部叶片组织结构的影响 | 第91-93页 |
| 2.5.3 对根系结构的影响 | 第93-94页 |
| 2.6 降解菌HN36对烟株超微结构的影响 | 第94-97页 |
| 2.6.1 对茎尖细胞超微结构的影响 | 第94-95页 |
| 2.6.2 对顶叶细胞超微结构的影响 | 第95-96页 |
| 2.6.3 对中部叶片细胞超微结构的影响 | 第96-97页 |
| 2.7 降解菌HN36对烟叶主要化学成分的影响 | 第97页 |
| 3 讨论 | 第97-99页 |
| 4 小结 | 第99-101页 |
| 第六章 研究结论与展望 | 第101-103页 |
| 1 主要研究结论 | 第101页 |
| 2 本研究创新点 | 第101-102页 |
| 3 展望 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-114页 |
| ABSTRACT | 第114-116页 |
| 攻读博士学位期间主要科研成果 | 第117页 |
