中文摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-10页 |
英文缩略词表 | 第11-12页 |
前言 | 第12-13页 |
1. XN51对AML细胞增殖的抑制作用 | 第13-28页 |
1.1 XN51的化学合成 | 第13-15页 |
1.1.1 材料、试剂 | 第13页 |
1.1.2 实验仪器 | 第13-14页 |
1.1.3 实验方法 | 第14-15页 |
1.1.3.1 药物合成 | 第14页 |
1.1.3.2 药物纯化 | 第14-15页 |
1.2 台盼蓝染色活细胞计数 | 第15-17页 |
1.2.1 材料、试剂 | 第15页 |
1.2.2 细胞株及培养条件 | 第15页 |
1.2.3 主要试剂的配制 | 第15页 |
1.2.4 实验仪器 | 第15-16页 |
1.2.5 实验方法 | 第16页 |
1.2.6 实验结果 | 第16-17页 |
1.3 MTT法检测XN51对AML细胞增殖抑制作用 | 第17-20页 |
1.3.1 材料、试剂 | 第17页 |
1.3.2 细胞株及培养条件 | 第17-18页 |
1.3.3 主要试剂的配制 | 第18页 |
1.3.4 实验仪器 | 第18页 |
1.3.5 实验方法 | 第18-19页 |
1.3.6 实验结果 | 第19-20页 |
1.4 XN51对AML细胞周期、线粒体膜电位和细胞凋亡的影响 | 第20-27页 |
1.4.1 材料、试剂 | 第21页 |
1.4.2 细胞株及培养条件 | 第21页 |
1.4.3 主要试剂的配制 | 第21-22页 |
1.4.4 实验仪器 | 第22页 |
1.4.5 实验方法 | 第22-23页 |
1.4.5.1 碘化丙啶染色流式细胞仪检测细胞周期 | 第22页 |
1.4.5.2 JC-1 染色检测XN51对AML细胞线粒体膜电位的影响 | 第22-23页 |
1.4.5.3 流式细胞仪检测XN51对AML细胞凋亡的影响 | 第23页 |
1.4.6 实验结果 | 第23-27页 |
1.4.6.1 XN51使HL-60和NB4细胞周期阻滞在S期 | 第23-25页 |
1.4.6.2 XN51降低HL-60和NB4细胞线粒体膜电位 | 第25-26页 |
1.4.6.3 XN51增加HL-60和NB4细胞凋亡比例 | 第26-27页 |
1.5 统计分析 | 第27页 |
1.6 讨论和结论 | 第27-28页 |
1.6.1 讨论 | 第27-28页 |
1.6.2 结论 | 第28页 |
2 XN51抑制AML细胞增殖与其影响Hsp90功能的关系 | 第28-42页 |
2.1 XN51对AML细胞周期及凋亡相关蛋白表达的影响 | 第28-34页 |
2.1.1 材料、试剂 | 第29页 |
2.1.2 细胞株及培养条件 | 第29页 |
2.1.3 主要试剂的配制 | 第29-31页 |
2.1.4 实验仪器 | 第31页 |
2.1.5 实验方法 | 第31-33页 |
2.1.5.1 提取总蛋白 | 第31-32页 |
2.1.5.2 BCA蛋白定量 | 第32页 |
2.1.5.3 蛋白免疫印迹 | 第32-33页 |
2.1.6 实验结果 | 第33-34页 |
2.2 (孔雀绿磷钼酸铵——无机磷检测法)检测XN51对HSP90蛋白ATP酶活性的影响 | 第34-36页 |
2.2.1 材料、试剂 | 第34页 |
2.2.2 主要试剂的配制 | 第34-35页 |
2.2.3 实验仪器 | 第35页 |
2.2.4 实验方法 | 第35-36页 |
2.2.4.1 Hsp90蛋白的表达和纯化 | 第35页 |
2.2.4.2 荧光滴定法检测XN51对Hsp90内源荧光的淬灭作用 | 第35-36页 |
2.2.5 实验结果 | 第36页 |
2.3 XN51对Hsp90客户蛋白的影响 | 第36-38页 |
2.3.1 实验原理和材料 | 第36-37页 |
2.3.2 实验试剂 | 第37页 |
2.3.3 试验方法 | 第37页 |
2.3.4 实验结果 | 第37-38页 |
2.4 统计分析 | 第38页 |
2.5 讨论和结论 | 第38-42页 |
2.5.1 讨论 | 第38-40页 |
2.5.2 结论 | 第40-42页 |
参考文献 | 第42-46页 |
文献综述 | 第46-53页 |
参考文献 | 第50-53页 |
致谢 | 第53页 |