| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略名词对照表 | 第11-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-17页 |
| 第2章 CXCR4+-BMSCs向SDF-1 定向趋化的实验 | 第17-30页 |
| 第一部分：山羊BMSCs的原代培养及鉴定 | 第17-21页 |
| 1 材料和方法 | 第17-19页 |
| 1.1 主要材料 | 第17页 |
| 1.2 主要仪器 | 第17-18页 |
| 1.3 细胞培养 | 第18页 |
| 1.4 BMSC的传代培养 | 第18页 |
| 1.5 BMSCs成骨、成脂、成软骨诱导实验 | 第18页 |
| 1.6 活死细胞染、DAPI染色 | 第18-19页 |
| 2 结果 | 第19-21页 |
| 2.1 BMSCs的形态 | 第19-20页 |
| 2.2 BMSCs活死细胞染色结果： | 第20页 |
| 2.3 BMSCs DAPI染色结果： | 第20-21页 |
| 第二部分：CXCR4慢病毒载体系统转染BMSCs | 第21-30页 |
| 1 材料和方法 | 第21-24页 |
| 1.1 主要试剂 | 第21页 |
| 1.2 主要仪器 | 第21页 |
| 1.3 CXCR4慢病毒载体系统转染BMSCs | 第21-22页 |
| 1.4 Western Bloting检测转染后BMSCs表达CXCR4蛋白 | 第22-24页 |
| 1.5 Transwell趋化实验 | 第24页 |
| 2 结果 | 第24-27页 |
| 3 讨论 | 第27-30页 |
| 3.1 BMSCs的原代培养与鉴定 | 第27-28页 |
| 3.2 CXCR4基因重组慢病毒载体转染BMSCs | 第28-29页 |
| 3.3 CXCR4+-BMSCs向SDF-1 定向迁移的变化 | 第29-30页 |
| 第3章 SDF-1 引导膜的制备及相关表征检测 | 第30-39页 |
| 1 材料和方法 | 第30-32页 |
| 1.1 主要材料、试剂和设备 | 第30页 |
| 1.2 制备SDF-1 引导膜 | 第30页 |
| 1.3 引导膜的表征及特性 | 第30-31页 |
| 1.4 活死细胞染色膜上的细胞 | 第31页 |
| 1.5 扫描电镜观察膜上的细胞 | 第31页 |
| 1.6 ELISA检测SDF-1 缓控释放 | 第31-32页 |
| 2 结果 | 第32-36页 |
| 2.1 SDF-1 引导膜的宏观、微观表现 | 第32页 |
| 2.2 荧光显微镜下观察培养细胞的膜 | 第32页 |
| 2.3 扫描电镜下观察SDF-1 膜上转染的BMSCs的生长情况 | 第32-34页 |
| 2.4 扫描电镜能谱分析 | 第34-36页 |
| 2.5 ELISA试剂盒检测SDF-1 的结果 | 第36页 |
| 2.6 细胞在膜上的生长曲线，MTS检测结果 | 第36页 |
| 3 讨论 | 第36-39页 |
| 第4章 SDF-1 引导膜协同BMP-2 促进CXCR4+-BMSCs修复大段骨缺损的研究 | 第39-46页 |
| 1 材料与方法 | 第39-41页 |
| 1.1 主要仪器 | 第39页 |
| 1.2 主要材料 | 第39-40页 |
| 1.3 在山羊体内构建介入微循环系统 | 第40页 |
| 1.4 灌注量的确定 | 第40-41页 |
| 1.5 细胞因子的剂量与给药方式 | 第41页 |
| 2 观察与检测内容 | 第41页 |
| 3 结果 | 第41-43页 |
| 3.1 山羊胫骨术后三维CT重建结果 | 第41-42页 |
| 3.2 山羊一般情况 | 第42页 |
| 3.3 影像学连续变化 | 第42-43页 |
| 4 讨论 | 第43-46页 |
| 第5章 结论与展望 | 第46-47页 |
| 5.1 结论 | 第46页 |
| 5.2 进一步工作的方向 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-54页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第54-55页 |
| 综述 | 第55-70页 |
| 参考文献 | 第64-70页 |
| 附件 | 第70页 |
