| 中文摘要 | 第4-8页 |
| abstract | 第8-13页 |
| 第1章 绪论 | 第18-24页 |
| 1.1 miRNA与神经病理性疼痛的关系 | 第19-20页 |
| 1.2 miRNA调控神经病理性疼痛的作用机制 | 第20-23页 |
| 1.3 立题依据 | 第23-24页 |
| 第2章 慢性神经病理性疼痛模型的建立及miRNA表达谱变化 | 第24-42页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第25-26页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第26-27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-35页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第27页 |
| 2.2.2 动物分组 | 第27页 |
| 2.2.3 坐骨神经分支选择性损伤(SNI)小鼠模型的建立 | 第27-28页 |
| 2.2.4 动物行为学测定 | 第28-29页 |
| 2.2.5 背根神经节分离培养 | 第29-30页 |
| 2.2.6 miRNA提取 | 第30-31页 |
| 2.2.7 miRNA预扩增 | 第31-32页 |
| 2.2.8 TaqMan低密度微阵列芯片PCR反应 | 第32页 |
| 2.2.9 实时荧光定量PCR | 第32-35页 |
| 2.2.10 数据统计 | 第35页 |
| 2.3 实验结果 | 第35-38页 |
| 2.3.1 模型组小鼠机械痛阈的变化 | 第35-36页 |
| 2.3.2 模型组小鼠热痛阈的变化 | 第36页 |
| 2.3.3 模型组小鼠冷痛敏的变化 | 第36-37页 |
| 2.3.4 TaqMan低密度微阵列芯片miRNA筛选情况 | 第37-38页 |
| 2.3.5 实时荧光定量PCR技术验证芯片筛选的miRNA | 第38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-42页 |
| 第3章 体外实验研究miR-449a对相关基因的调控 | 第42-58页 |
| 3.1 实验材料 | 第42-44页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第42-43页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第43-44页 |
| 3.2 实验方法 | 第44-52页 |
| 3.2.1 miR-449a的靶基因预测 | 第44页 |
| 3.2.2 坐骨神经分支选择性损伤(SNI)小鼠模型的建立 | 第44-45页 |
| 3.2.3 背根神经节分离培养 | 第45页 |
| 3.2.4 细胞瞬时转染 | 第45-46页 |
| 3.2.5 荧光素酶报告基因实验 | 第46页 |
| 3.2.6 实时荧光定量PCR | 第46-49页 |
| 3.2.7 Western blot | 第49-52页 |
| 3.2.8 数据统计 | 第52页 |
| 3.3 结果 | 第52-55页 |
| 3.3.1 miRNA-449a的靶基因预测 | 第52页 |
| 3.3.2 双荧光素酶报告基因实验 | 第52-53页 |
| 3.3.3 miR-449a对DRG细胞中KCNMA1表达的影响 | 第53-55页 |
| 3.4 讨论 | 第55-58页 |
| 第4章 外源性miR-449a对慢性神经病理性疼痛的镇痛作用及相关机制 | 第58-78页 |
| 4.1 实验材料 | 第58-60页 |
| 4.1.1 实验试剂 | 第58-59页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第59-60页 |
| 4.2 实验方法 | 第60-69页 |
| 4.2.0 DRG显微注射术 | 第60-61页 |
| 4.2.1 构建SNI模型 | 第61-62页 |
| 4.2.2 动物行为学测定 | 第62-63页 |
| 4.2.3 背根神经节分离培养 | 第63-64页 |
| 4.2.4 实时荧光定量PCR | 第64-66页 |
| 4.2.5 Western blot | 第66-69页 |
| 4.2.6 数据统计 | 第69页 |
| 4.3 结果 | 第69-73页 |
| 4.3.1 miR-449a对小鼠模型的机械痛行为学的影响 | 第69-70页 |
| 4.3.2 miR-449a对小鼠模型的热痛行为学的影响 | 第70-71页 |
| 4.3.3 miR-449a对小鼠模型的冷痛行为学的影响 | 第71-72页 |
| 4.3.4 miR-449a对SNI模型的KCNMA1表达的影响 | 第72-73页 |
| 4.4 讨论 | 第73-78页 |
| 全文小结 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-86页 |
| 综述 | 第86-96页 |
| 参考文献 | 第92-96页 |
| 攻读博士期间所取得的科研成果 | 第96-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
