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受hTERT启动子调控的Noxa和Puma基因诱导肝癌细胞凋亡的实验研究

中文摘要第4-8页
abstract第8-12页
缩略词注释表第15-16页
第1章 综述第16-27页
    1.1 肝癌第16-18页
        1.1.1 肝癌的研究现状第16页
        1.1.2 肝癌的分子机制第16-18页
    1.2 细胞凋亡第18-20页
    1.3 肿瘤细胞的迁移与侵袭第20-21页
    1.4 Bcl-2蛋白家族第21-25页
        1.4.1 BH3-only蛋白第22页
        1.4.2 Noxa与Puma蛋白第22-25页
    1.5 人端粒酶与肝癌第25-27页
第2章 材料和方法第27-41页
    2.1 器材与设备第27页
    2.2 实验材料第27-30页
        2.2.1 细胞系第27页
        2.2.2 主要试剂第27-29页
        2.2.3 Real-time PCR 引物(种属:人)第29-30页
    2.3 实验方法第30-41页
        2.3.1 pcTERT-Noxa、pcTRET-Puma重组质粒的构建第30-31页
        2.3.2 大肠杆菌DH5α感受态的制备第31页
        2.3.3 质粒转化第31页
        2.3.4 质粒提取第31-32页
        2.3.5 HepG2细胞培养第32-33页
        2.3.6 HepG2细胞转染第33-34页
        2.3.7 实验分组第34页
        2.3.8 CCK-8法分析转染后HepG2细胞增殖情况第34页
        2.3.9 Hoechst33258染色分析转染后HepG2细胞凋亡情况第34-35页
        2.3.10 Annexin V-FITC分析转染后HepG2细胞凋亡情况第35页
        2.3.11 克隆形成实验分析转染后HepG2细胞增殖情况第35-36页
        2.3.12 细胞划痕实验分析转染后HepG2细胞迁移情况第36页
        2.3.13 Transwell实验分析转染后HepG2细胞迁移与侵袭情况第36-37页
        2.3.14 细胞总蛋白提取第37页
        2.3.15 蛋白免疫印迹(western blot)第37-39页
        2.3.16 RNA提取及逆转录第39-40页
        2.3.17 实时荧光定量PCR(Real-time PCR)第40-41页
第3章 实验结果第41-58页
    3.1 pcTERT-Noxa和pcTERT-Puma重组质粒的鉴定第41页
    3.2 光学显微镜下观察重组质粒转染后HepG2细胞形态变化第41-42页
    3.3 重组质粒转染HepG2细胞后Noxa、PumamRNA表达水平第42-43页
    3.4 CCK-8法检测重组质粒转染后HepG2细胞生存率第43-44页
    3.5 Hoechst33258染色观察重组质粒转染后HepG2细胞凋亡形态第44-45页
    3.6 Annexin V-FITC法检测重组质粒转染后HepG2细胞凋亡率第45-46页
    3.7 克隆形成实验分析重组质粒转染后HepG2细胞增殖能力第46-48页
    3.8 细胞划痕实验分析重组质粒转染后HepG2细胞迁移能力第48-50页
    3.9 Transwell实验分析重组质粒转染后HepG2细胞迁移与侵袭能力第50-53页
    3.10 Real-timePCR检测重组质粒转染HepG2细胞后凋亡与迁移侵袭相关基因mRNA表达水平第53-55页
    3.11 免疫印迹分析重组质粒转染HepG2细胞后凋亡相关蛋白表达水平第55-57页
    3.12 pcTERT-Noxa、pcTERT-Puma质粒差异性影响HepG2细胞和HL7702 细胞生存率第57-58页
第4章 讨论第58-61页
第5章 结论第61-62页
参考文献第62-70页
致谢第70页

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