| 摘要 | 第3-8页 |
| abstract | 第8-13页 |
| 中英文缩略词表 | 第16-17页 |
| 第1章 引言 | 第17-19页 |
| 第2章 材料与方法 | 第19-38页 |
| 2.1 材料 | 第19-21页 |
| 2.1.1 细胞株 | 第19页 |
| 2.1.2 细菌 | 第19页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第20-21页 |
| 2.2 方法 | 第21-37页 |
| 2.2.1 主要溶液配置 | 第21-23页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第23-25页 |
| 2.2.3 Tim3~(Low)与Tim3~(High)RAW264.7细胞的构建 | 第25-28页 |
| 2.2.4 细菌培养 | 第28页 |
| 2.2.5 实验分组 | 第28-29页 |
| 2.2.6 荧光定量PCR检测 | 第29-32页 |
| 2.2.7 WesternBlot检测TLR4、MyD88、pNF-ΚB的表达 | 第32-34页 |
| 2.2.8 流式检测F4/80、CD16/CD32、CD206的表达 | 第34页 |
| 2.2.9 流式检测H.pylori感染后RAW264.7的吞噬功能 | 第34页 |
| 2.2.10 ELISA法检测培养上清中TGF-β、TNF-α的水平 | 第34-37页 |
| 2.3 统计学处理 | 第37-38页 |
| 第3章 结果 | 第38-51页 |
| 3.1 H.pylori感染对巨噬细胞极化及吞噬功能的影响 | 第38-41页 |
| 3.1.1 Real-timePCR检测H.pylori感染后巨噬细胞相关细胞因子表达 | 第38页 |
| 3.1.2 ELISA检测H.pylori刺激后RAW264.7细胞培养上清中TNF-α、TGF-β的水平 | 第38-39页 |
| 3.1.3 流式细胞术检测H.pylori感染后巨噬细胞M1和M2细胞比 | 第39-40页 |
| 3.1.4 流式细胞术检测H.pylori感染后巨噬细胞吞噬功能改变 | 第40-41页 |
| 3.2 Tim3对H.pylori感染后巨噬细胞极化状态及吞噬功能的影响 | 第41-48页 |
| 3.2.1 Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞的构建 | 第41-42页 |
| 3.2.2 Real-timePCR检测H.pylori感染后Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞相关细胞因子表达 | 第42-43页 |
| 3.2.3 ELISA检测H.pylori感染后Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞培养上清中TNF-α、TGF-β的水平 | 第43-44页 |
| 3.2.4 流式细胞术检测H.pylori感染后Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞M1型和M2型细胞比 | 第44-46页 |
| 3.2.5 流式细胞术检测H.pylori感染后Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞吞噬功能改变 | 第46-48页 |
| 3.3 Tim3调控H.pylori感染时巨噬细胞极化的可能机制 | 第48-51页 |
| 3.3.1 WesternBlot检测H.pylori感染后Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞TLR4蛋白的表达 | 第48页 |
| 3.3.2 WesternBlot检测H.pylori感染后Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞MyD88蛋白的表达 | 第48-49页 |
| 3.3.3 WesternBlot检测H.pylori感染后Tim3~(Low)及Tim3~(High)RAW264.7细胞pNF-κB蛋白的表达 | 第49-51页 |
| 第4章 讨论 | 第51-55页 |
| 4.1 H.pylori感染对巨噬细胞极化的影响 | 第51-52页 |
| 4.2 Tim3对巨噬细胞极化的调控及其在H.pylori感染中的作用 | 第52-53页 |
| 4.3 Tim3对巨噬细胞吞噬功能的调节及其在H.pylori感染中的作用 | 第53-55页 |
| 第5章 结论 | 第55-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-60页 |
| 攻读学位期间的科研成果 | 第60-61页 |
| 综述 | 第61-67页 |
| 参考文献 | 第66-67页 |
