脂多糖及铜离子胁迫下厚壳贻贝补体C3分子表达研究
| 摘要 | 第8-9页 |
| ABSTRACT | 第9-10页 |
| 引言 | 第13-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-25页 |
| 1.1 补体系统概述 | 第15-16页 |
| 1.2 补体C3概述 | 第16-20页 |
| 1.2.1 补体C3基因和分子结构特征 | 第16-18页 |
| 1.2.2 补体C3功能 | 第18-20页 |
| 1.2.2.1 补体C3的生物学活性 | 第18-19页 |
| 1.2.2.2 C3相关疾病 | 第19-20页 |
| 1.3 厚壳贻贝概述 | 第20-23页 |
| 1.3.1 厚壳贻贝的生物学特性 | 第20-21页 |
| 1.3.2 厚壳贻贝的营养成分 | 第21-22页 |
| 1.3.3 养殖现状 | 第22-23页 |
| 1.4 研究目的与意义 | 第23-25页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第23页 |
| 1.4.2 研究意义 | 第23-25页 |
| 第二章 厚壳贻贝补体C3基因cDNA克隆表达 | 第25-37页 |
| 2.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.1 样品材料 | 第25页 |
| 2.1.2 实验试剂及仪器 | 第25-26页 |
| 2.2 厚壳贻贝总RNA提取 | 第26-29页 |
| 2.2.1 前期准备 | 第26页 |
| 2.2.2 总RNA提取 | 第26-27页 |
| 2.2.3 RNA逆转录 | 第27页 |
| 2.2.4 厚壳贻贝C3核心序列扩增 | 第27-29页 |
| 2.3 RACE获得C3基因cDNA的全长 | 第29-32页 |
| 2.4 PCR产物的纯化与克隆 | 第32页 |
| 2.5 生物信息分析 | 第32页 |
| 2.6 结果与讨论 | 第32-37页 |
| 2.6.1 厚壳贻贝C3基因克隆及分子特征分析 | 第32-36页 |
| 2.6.2 厚壳贻贝C3系统进化树分析 | 第36-37页 |
| 第三章 厚壳贻贝C3基因组织特异性表达 | 第37-41页 |
| 3.1 实验材料 | 第37页 |
| 3.1.1 实验样品 | 第37页 |
| 3.1.2 实验试剂与仪器 | 第37页 |
| 3.1.2.1 实验试剂 | 第37页 |
| 3.1.2.2 实验仪器 | 第37页 |
| 3.2 实验方法 | 第37-40页 |
| 3.2.1 厚壳贻贝组织总RNA提取 | 第37-38页 |
| 3.2.2 cDNA模板合成 | 第38-39页 |
| 3.2.3 荧光定量PCR引物设计 | 第39页 |
| 3.2.4 实时荧光定量 | 第39页 |
| 3.2.5 荧光数据分析 | 第39-40页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第40-41页 |
| 第四章 脂多糖及铜离子胁迫下厚壳贻贝C3基因表达 | 第41-49页 |
| 4.1 实验材料 | 第41页 |
| 4.1.1 样品材料 | 第41页 |
| 4.1.2 实验仪器及试剂 | 第41页 |
| 4.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 4.2.1 铜离子胁迫 | 第41-42页 |
| 4.2.2 脂多糖刺激 | 第42页 |
| 4.2.3 样品处理 | 第42-43页 |
| 4.2.4 荧光定量PCR | 第43-44页 |
| 4.2.5 荧光数据分析 | 第44页 |
| 4.3 结果分析与讨论 | 第44-49页 |
| 结论 | 第49-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-58页 |
