| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 目录 | 第7-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-22页 |
| 1.1 荧光探针概述 | 第9-16页 |
| 1.1.1 荧光发光原理 | 第9页 |
| 1.1.2 荧光探针的识别机理 | 第9-11页 |
| 1.1.3 pH荧光探针的研究进展 | 第11-16页 |
| 1.2 靶向脂质体概述 | 第16-20页 |
| 1.2.1 脂质体概述 | 第16-17页 |
| 1.2.2 脂质体作为药物载体的特点 | 第17-18页 |
| 1.2.3 脂质体的功能改性 | 第18-20页 |
| 1.3 课题的提出与研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 半花菁结构比值式pH荧光探针的研究 | 第22-36页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 实验部分 | 第22-24页 |
| 2.2.1 实验试剂及仪器设备 | 第22-23页 |
| 2.2.2 目标探针的合成 | 第23-24页 |
| 2.3 CyP探针光谱性能测试方法 | 第24页 |
| 2.3.1 探针母液的配制和稀释 | 第24页 |
| 2.3.2 探针的pH滴定实验 | 第24页 |
| 2.3.3 离子干扰实验 | 第24页 |
| 2.4 CyP的细胞毒性研究 | 第24-26页 |
| 2.4.1 细胞复苏 | 第25页 |
| 2.4.2 细胞传代 | 第25页 |
| 2.4.3 细胞计数 | 第25页 |
| 2.4.4 体外细胞毒性实验 | 第25-26页 |
| 2.4.5 荧光显微镜实验 | 第26页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第26-35页 |
| 2.5.1 探针的合成与表征 | 第27-28页 |
| 2.5.2 CyP的光谱性质 | 第28-29页 |
| 2.5.3 不同pH值对CyP荧光发射光谱的影响及pK_a的测定 | 第29-30页 |
| 2.5.4 CyP与H~+结合的选择性研究 | 第30-31页 |
| 2.5.5 不同pH值对CyP紫外-可见光谱的影响 | 第31-32页 |
| 2.5.6 探针对H~+响应机理的讨论 | 第32-34页 |
| 2.5.7 探针的细胞毒性研究 | 第34页 |
| 2.5.8 CyP的体外细胞荧光成像 | 第34-35页 |
| 2.6 小结 | 第35-36页 |
| 第三章 叶酸修饰CMD脂质体的研究 | 第36-53页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验部分 | 第36-41页 |
| 3.2.1 主要实验试剂及仪器设备 | 第36-37页 |
| 3.2.2 叶酸修饰两亲性羧甲基葡聚糖(FA-CMD)的合成及表征 | 第37-38页 |
| 3.2.3 叶酸靶向脂质体的制备及表征 | 第38-39页 |
| 3.2.4 DOX脂质体的制备 | 第39-40页 |
| 3.2.5 DOX浓度标准曲线的绘制 | 第40页 |
| 3.2.6 DOX包封率的测定 | 第40页 |
| 3.2.7 DOX脂质体体外释放性能的研究 | 第40-41页 |
| 3.2.8 脂质体体外细胞毒性的研究 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-51页 |
| 3.3.1 两亲性CMD和FA-CMD的表征 | 第41-43页 |
| 3.3.2 FA-CMD-LIPs的形貌和结构 | 第43-44页 |
| 3.3.3 脂质体的粒径和ζ-电位 | 第44-45页 |
| 3.3.4 脂质体的稳定性能 | 第45-47页 |
| 3.3.5 DOX脂质体的药物缓释性能 | 第47-48页 |
| 3.3.6 脂质体对HeLa细胞的毒性 | 第48-49页 |
| 3.3.7 阿霉素脂质体对HeLa细胞的毒性 | 第49-51页 |
| 3.4 小结 | 第51-53页 |
| 第四章 总结与展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-61页 |
| 附录 | 第61-62页 |
| 攻读硕士学位期间主要研究成果 | 第62-63页 |
| 致谢 | 第63页 |
