| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 目录 | 第8-11页 |
| 缩写词表 | 第11-12页 |
| 1. 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 小麦育种趋势 | 第12-13页 |
| 1.2 小麦储藏蛋白 | 第13-16页 |
| 1.2.1 小麦HMW-GS | 第14页 |
| 1.2.2 HMW-GS研究进展 | 第14-15页 |
| 1.2.3 小麦1Ay基因家族研究现状 | 第15页 |
| 1.2.4 分子标记在HMW-GS研究中的应用 | 第15-16页 |
| 1.3 小麦抗性基因分子标记研究进展 | 第16-18页 |
| 1.4 小麦其他农艺性状基因分子标记研究进展 | 第18页 |
| 1.5 本论文研究的目的及意义 | 第18-20页 |
| 2.部分小麦品种（系）高分子量麦谷蛋白亚基分析 | 第20-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 小麦麦谷蛋白的提取 | 第20-21页 |
| 2.2.2 SDS-PAGE检测小麦HMW-GS组成 | 第21-23页 |
| 2.3 结果与分析 | 第23-25页 |
| 2.3.1 供试小麦材料的HMW-GS 等位变异 | 第24-25页 |
| 2.3.2 供试小麦材料HMW-GS的组合类型 | 第25页 |
| 2.4 讨论 | 第25-27页 |
| 3. Dx5近似亚基分子标记鉴定及部分片段克隆分析 | 第27-32页 |
| 3.1 实验材料 | 第27页 |
| 3.2 实验方法 | 第27-29页 |
| 3.2.1 CTAB法提取植物基因组DNA | 第27-28页 |
| 3.2.2 分子标记检测 | 第28-29页 |
| 3.2.3 DNA回收测序 | 第29页 |
| 3.2.4 序列分析 | 第29页 |
| 3.3 结果与分析 | 第29-31页 |
| 3.4 讨论 | 第31-32页 |
| 4. 对偃展99（98）1Ay假基因的同源性分析 | 第32-42页 |
| 4.1 实验材料 | 第32页 |
| 4.2 实验方法 | 第32-34页 |
| 4.2.1 使用CTAB法提取小麦幼苗的DNA | 第32页 |
| 4.2.2 1Ay假基因PCR扩增 | 第32-33页 |
| 4.2.3 DNA回收测序 | 第33页 |
| 4.2.4 DNA扩增片段克隆测序 | 第33-34页 |
| 4.3 结果与分析 | 第34-41页 |
| 4.4 讨论 | 第41-42页 |
| 5. 小麦麦谷蛋白分子标记验证分析 | 第42-52页 |
| 5.1. 实验材料 | 第42页 |
| 5.2. 实验方法 | 第42-44页 |
| 5.2.1 半粒种子SDS法提取植物基因组DNA | 第42-44页 |
| 5.2.2 PCR扩增检测 | 第44页 |
| 5.3. 结果与分析 | 第44-50页 |
| 5.3.1 麦谷蛋白亚基分子标记信息汇总 | 第44-45页 |
| 5.3.2 品质性状分子标记的验证 | 第45-47页 |
| 5.3.3 利用HMW-GS分子标记检测59个小麦HMW-GS组成 | 第47-50页 |
| 5.4. 讨论 | 第50-52页 |
| 6. 小麦部分抗性基因分子标记验证 | 第52-59页 |
| 6.1. 实验材料 | 第52页 |
| 6.2. 实验方法 | 第52-56页 |
| 6.2.1 半粒种子SDS法提取植物基因组DNA | 第52页 |
| 6.2.2 分子标记PCR条件优化 | 第52页 |
| 6.2.3 变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第52-54页 |
| 6.2.4 非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第54-55页 |
| 6.2.5 凝胶电泳结果观察 | 第55-56页 |
| 6.3 结果与分析 | 第56-58页 |
| 6.4 讨论 | 第58-59页 |
| 7. 总结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-70页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第70-71页 |
| 致谢 | 第71页 |
