| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩略词表 | 第18-19页 |
| 第1章 引言 | 第19-24页 |
| 第2章 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411的制剂学研究 | 第24-48页 |
| 1 仪器与试剂 | 第24-25页 |
| 1.1 仪器 | 第24-25页 |
| 1.2 试剂 | 第25页 |
| 2 实验方法 | 第25-32页 |
| 2.1 空白脂质体的制备 | 第25-26页 |
| 2.2 空白脂质体的制备处方筛选 | 第26页 |
| 2.2.1 磷脂和胆固醇的比例 | 第26页 |
| 2.2.2 孵育温度 | 第26页 |
| 2.2.3 探超时间 | 第26页 |
| 2.3 Lipo/HMME/ACF的制备 | 第26页 |
| 2.4 Lipo/HMME/ACF的制备处方筛选 | 第26-27页 |
| 2.4.1 孵育温度 | 第27页 |
| 2.4.2 孵育时间 | 第27页 |
| 2.4.3 药脂比 | 第27页 |
| 2.5 Lipo/HMME/ACF@MnO_2的制备 | 第27页 |
| 2.6 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411的制备 | 第27-28页 |
| 2.7 HMME和ACF含量测定方法的建立 | 第28-29页 |
| 2.7.1 检测波长的确定 | 第28页 |
| 2.7.2 色谱条件 | 第28页 |
| 2.7.3 专属性考察 | 第28页 |
| 2.7.4 标准曲线的建立 | 第28-29页 |
| 2.7.5 准确度考察 | 第29页 |
| 2.7.6 精密度考察 | 第29页 |
| 2.8 包封率的测定 | 第29-30页 |
| 2.9 脂质体的性质考察 | 第30-31页 |
| 2.9.1 稳定性 | 第30页 |
| 2.9.2 粒径分布及Zeta电位的考察 | 第30页 |
| 2.9.3 透射电镜(TEM)、元素分布(Mapping)及元素分析(EDX) | 第30页 |
| 2.9.4 紫外全波长扫描图(UV) | 第30页 |
| 2.9.5 凝胶电泳分析 | 第30-31页 |
| 2.10 体外释药行为的考察 | 第31页 |
| 2.11 体外MRI考察 | 第31-32页 |
| 2.12 统计学分析 | 第32页 |
| 3 结果与讨论 | 第32-47页 |
| 3.1 空白脂质体的制备处方筛选 | 第32-34页 |
| 3.1.1 磷脂和胆固醇的比例 | 第32页 |
| 3.1.2 孵育温度 | 第32-33页 |
| 3.1.3 探超时间 | 第33页 |
| 3.1.4 空白脂质体的最优制备处方 | 第33-34页 |
| 3.2 Lipo/HMME/ACF的制备处方筛选 | 第34-35页 |
| 3.2.1 孵育温度 | 第34页 |
| 3.2.2 孵育时间 | 第34页 |
| 3.2.3 药脂比 | 第34-35页 |
| 3.2.4 Lipo/HMME/ACF的最优制备处方 | 第35页 |
| 3.3 HMME和ACF含量HPLC测定方法 | 第35-39页 |
| 3.3.1 检测波长的确定 | 第35-36页 |
| 3.3.2 专属性考察 | 第36-37页 |
| 3.3.3 标准曲线的建立 | 第37页 |
| 3.3.4 准确度考察 | 第37-38页 |
| 3.3.5 精密度考察 | 第38-39页 |
| 3.4 包封率的测定 | 第39页 |
| 3.5 脂质体的性质考察 | 第39-47页 |
| 3.5.1 稳定性 | 第39-40页 |
| 3.5.2 粒径分布及zeta电位的考察 | 第40-41页 |
| 3.5.3 透射电子显微镜(TEM)、元素分布(Mapping)及元素分析(EDX) | 第41-43页 |
| 3.5.4 紫外可见全波长扫描(UV-Vis) | 第43页 |
| 3.5.5 凝胶电泳分析 | 第43-44页 |
| 3.5.6 体外释药行为 | 第44-46页 |
| 3.5.7 体外MRI考察 | 第46-47页 |
| 4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第3章 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411的体外抗肿瘤活性研究 | 第48-70页 |
| 1 仪器和试剂 | 第48-50页 |
| 1.1 仪器 | 第48-49页 |
| 1.2 试剂 | 第49-50页 |
| 2 实验所需溶液的配制 | 第50-51页 |
| 2.1 PBS的配制 | 第50页 |
| 2.2 含血清培养基的配制 | 第50页 |
| 2.3 细胞冻存液的配制 | 第50页 |
| 2.4 1%乙酸溶液的配制 | 第50页 |
| 2.5 4%SRB溶液的配制 | 第50页 |
| 2.6 50%TCA溶液的配制 | 第50-51页 |
| 2.7 10mM Tris碱液的配制 | 第51页 |
| 3 实验方法 | 第51-56页 |
| 3.1 细胞培养 | 第51-52页 |
| 3.1.1 细胞培养前的准备 | 第51页 |
| 3.1.2 细胞传代 | 第51页 |
| 3.1.3 细胞计数 | 第51-52页 |
| 3.2 细胞摄取 | 第52页 |
| 3.3 细胞抑制率考察 | 第52-53页 |
| 3.3.1 SRB法检测抑制率 | 第52-53页 |
| 3.3.2 Lipo@MnO_2、HMME和ACF在常氧和乏氧条件下的细胞毒性 | 第53页 |
| 3.3.3 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411的细胞抑制率 | 第53页 |
| 3.4 单细胞凝胶电泳 | 第53-54页 |
| 3.5 细胞凋亡 | 第54-55页 |
| 3.6 qPCR测定VEGFmRNA的表达 | 第55页 |
| 3.7 Westernblotting实验 | 第55-56页 |
| 4 结果与讨论 | 第56-68页 |
| 4.1 细胞摄取 | 第56-59页 |
| 4.2 细胞抑制率考察 | 第59-61页 |
| 4.3 单细胞凝胶电泳 | 第61-63页 |
| 4.4 细胞凋亡 | 第63-64页 |
| 4.5 qPCR测定VEGF mRNA的表达 | 第64-66页 |
| 4.6 Western blotting实验 | 第66-68页 |
| 5 本章小结 | 第68-70页 |
| 第4章 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411的体内抗肿瘤活性研究 | 第70-85页 |
| 1 仪器与试剂 | 第70-71页 |
| 1.1 仪器 | 第70页 |
| 1.2 试剂 | 第70-71页 |
| 1.3 实验动物 | 第71页 |
| 2 实验方法 | 第71-74页 |
| 2.1 荷瘤裸鼠模型的建立 | 第71页 |
| 2.2 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411在裸鼠体内的组织分布研究 | 第71-72页 |
| 2.2.1 IR780含量测定方法的建立 | 第71-72页 |
| 2.2.2 Lipo/IR780@MnO_2-AS1411的制备 | 第72页 |
| 2.2.3 Lipo/IR780@MnO_2-AS1411在裸鼠体内的组织分布 | 第72页 |
| 2.3 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411体内抗肿瘤活性研究 | 第72-73页 |
| 2.3.1 肿瘤生长抑制的药效学考察 | 第72-73页 |
| 2.3.2 HE染色病理切片考察 | 第73页 |
| 2.3.3 TUNEL凋亡考察 | 第73页 |
| 2.4 体内磁共振成像图 | 第73-74页 |
| 3 结果与讨论 | 第74-83页 |
| 3.1 IR780标准曲线的建立 | 第74页 |
| 3.2 Lipo/HMME/ACF@MnO_2-AS1411在裸鼠体内的组织分布研究 | 第74-77页 |
| 3.3 体内抗肿瘤活性考察 | 第77-82页 |
| 3.3.1 荷瘤裸鼠瘤体积和体重变化 | 第77-80页 |
| 3.3.2 HE染色病理切片 | 第80-81页 |
| 3.3.3 TUNEL凋亡 | 第81-82页 |
| 3.4 体内磁共振成像图 | 第82-83页 |
| 4 本章小结 | 第83-85页 |
| 第5章 全文总结 | 第85-87页 |
| 参考文献 | 第87-92页 |
| 个人简介 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93页 |
