摘要 | 第4-7页 |
Abstract | 第7-10页 |
英文缩略语 | 第11-17页 |
第一部分:丹参酮ⅡA对阿霉素抗乳腺癌细胞活性的影响 | 第17-31页 |
1 前言 | 第17-18页 |
2 材料与方法 | 第18-22页 |
2.1 实验材料 | 第18-20页 |
2.1.1 主要试剂 | 第18-19页 |
2.1.2 主要仪器 | 第19页 |
2.1.3 主要药品的配制 | 第19页 |
2.1.4 细胞 | 第19-20页 |
2.2 MTS法检测丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞增殖的影响 | 第20页 |
2.3 MTS法检测丹参酮ⅡA干预对阿霉素抑制MCF-7及MCF-7/dox细胞增殖的影响 | 第20-21页 |
2.4 流式细胞法检测丹参酮ⅡA干预对阿霉素诱导MCF-7及MCF-7/dox细胞凋亡的影响 | 第21页 |
2.5 流式细胞法检测丹参酮ⅡA干预对阿霉素杀伤BCSCs作用的影响 | 第21页 |
2.6 Transwell小室法检测丹参酮ⅡA干预对阿霉素抑制MCF-7及MCF-7/dox细胞侵袭的影响 | 第21-22页 |
2.7 流式细胞法检测丹参酮ⅡA干预对MCF-7及MCF-7/dox细胞内阿霉素积累的影响 | 第22页 |
2.8 统计分析 | 第22页 |
3 实验结果 | 第22-28页 |
3.1 丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞增殖的影响 | 第22-23页 |
3.2 丹参酮ⅡA干预对阿霉素抑制MCF-7及MCF-7/dox细胞增殖的影响 | 第23-24页 |
3.3 丹参酮ⅡA干预对阿霉素诱导MCF-7及MCF-7/dox细胞凋亡的影响 | 第24-25页 |
3.4 丹参酮ⅡA干预对阿霉素杀伤BCSCs作用的影响 | 第25-26页 |
3.5 丹参酮ⅡA干预对阿霉素抑制MCF-7及MCF-7/dox细胞侵袭的影响 | 第26-27页 |
3.6 丹参酮ⅡA干预对MCF-7及MCF-7/dox细胞内阿霉素积累的影响 | 第27-28页 |
4 讨论 | 第28-30页 |
5 结论 | 第30-31页 |
第二部分:丹参酮ⅡA增强阿霉素抗乳腺癌细胞活性的机制 | 第31-52页 |
1 前言 | 第31-32页 |
2 实验材料和方法 | 第32-38页 |
2.1 实验材料 | 第32-33页 |
2.1.1 主要试剂 | 第32-33页 |
2.1.2 主要仪器 | 第33页 |
2.1.3 主要药品的配制 | 第33页 |
2.1.4 细胞 | 第33页 |
2.2 Westernblot法检测MCF-7及MCF-7/dox细胞生物学特性的差异 | 第33-35页 |
2.2.1 总蛋白提取 | 第34页 |
2.2.2 总蛋白定量 | 第34页 |
2.2.3 制胶 | 第34页 |
2.2.4 电泳 | 第34页 |
2.2.5 转膜 | 第34-35页 |
2.2.6 免疫反应 | 第35页 |
2.2.7 化学发光显影 | 第35页 |
2.3 Westernblot法检测阿霉素联合丹参酮ⅡA干预前后MCF-7及MCF-7/dox细胞外排型ABC转运蛋白及PTEN/PI3K/AKT信号通路相关蛋白的表达变化 | 第35页 |
2.4 MTS法检测PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞增殖抑制作用的变化 | 第35-36页 |
2.5 流式细胞法检测PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞诱导凋亡作用的变化 | 第36页 |
2.6 流式细胞法检测PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对BCSCs的杀伤作用的变化 | 第36-37页 |
2.7 Transwell小室法检测PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞侵袭抑制作用的变化 | 第37页 |
2.8 流式细胞法检测PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预对阿霉素联合丹参酮ⅡA后阿霉素在MCF-7及MCF-7/dox细胞内积累的影响 | 第37页 |
2.9 Westernblot法检测PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA处理的MCF-7及MCF-7/dox细胞外排型ABC转运蛋白及PTEN/PI3K/AKT信号通路相关蛋白的表达变化 | 第37-38页 |
2.10 统计分析 | 第38页 |
3 结果 | 第38-49页 |
3.1 PTEN及p-AKT在MCF-7及MCF-7/dox细胞中表达上的差异 | 第38-39页 |
3.2 外排型ABC转运蛋白P-gp、BCRP及MRP1在MCF-7及MCF-7/dox细胞中表达上的差异 | 第39-40页 |
3.3 阿霉素联合丹参酮ⅡA干预前后MCF-7及MCF-7/dox细胞内PTEN和p-AKT的表达变化 | 第40-41页 |
3.4 阿霉素联合丹参酮ⅡA干预前后MCF-7及MCF-7/dox细胞内外排型ABC转运蛋白P-gp、BCRP及MRP1的表达变化 | 第41-42页 |
3.5 PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞增殖抑制作用的变化 | 第42-43页 |
3.6 PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞诱导凋亡作用的变化 | 第43-44页 |
3.7 PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对BCSCs的杀伤作用的变化 | 第44-45页 |
3.8 PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA对MCF-7及MCF-7/dox细胞侵袭抑制作用的变化 | 第45-46页 |
3.9 PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预对阿霉素联合丹参酮ⅡA后阿霉素在MCF-7及MCF-7/dox细胞内积累的影响 | 第46-47页 |
3.10 PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA处理的MCF-7及MCF-7/dox细胞内PTEN及p-AKT | 第47-48页 |
3.11 PTEN抑制剂bpV(Hopic)干预前后阿霉素联合丹参酮ⅡA处理的MCF-7及MCF-7/dox细胞外排型ABC转运蛋白P-gp、BCRP及MRP1的表达变化 | 第48-49页 |
4 讨论 | 第49-51页 |
5 结论 | 第51-52页 |
第三部分:丹参酮ⅡA裸鼠体内增强阿霉素抗乳腺活性的实验研究 | 第52-60页 |
1 前言 | 第52页 |
2 实验材料和方法 | 第52-55页 |
2.1 实验材料 | 第52-54页 |
2.1.1 主要试剂 | 第52-53页 |
2.1.2 主要仪器 | 第53页 |
2.1.3 主要药品的配制 | 第53页 |
2.1.4 细胞 | 第53-54页 |
2.1.5 动物 | 第54页 |
2.2 细胞悬液制备 | 第54页 |
2.3 裸鼠皮下成瘤及腹腔内注射给药 | 第54页 |
2.4 裸鼠的观察 | 第54页 |
2.5 瑞氏染色法骨髓涂片染色 | 第54-55页 |
2.6 生物化学检测 | 第55页 |
2.7 统计分析 | 第55页 |
3 结果 | 第55-59页 |
3.1 丹参酮ⅡA干预对接受阿霉素治疗裸鼠肿瘤生长的影响 | 第55-56页 |
3.2 丹参酮ⅡA干预对接受阿霉素治疗裸鼠体重的影响 | 第56页 |
3.3 丹参酮ⅡA干预对接受阿霉素治疗裸鼠骨髓造血功能的影响 | 第56-57页 |
3.4 丹参酮ⅡA干预对接受阿霉素治疗裸鼠心肌损伤程度的影响 | 第57-58页 |
3.5 丹参酮ⅡA干预对接受阿霉素治疗裸鼠肾脏损伤程度的影响 | 第58-59页 |
4 讨论 | 第59页 |
5 结论 | 第59-60页 |
本研究创新性的自我评价 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-66页 |
综述 | 第66-75页 |
参考文献 | 第70-75页 |
在学期间所取得的研究成果 | 第75-76页 |
致谢 | 第76-77页 |
个人简介 | 第77页 |