| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第8-16页 |
| 1.1 药物转运蛋白分类 | 第8页 |
| 1.2 有机阴离子转运蛋白 | 第8-11页 |
| 1.2.1 有机阴离子转运蛋白OAT | 第9-10页 |
| 1.2.2 有机阴离子转运蛋白OAT | 第10页 |
| 1.2.3 OAT1和OAT3的表达水平和同源性 | 第10-11页 |
| 1.3 OATs的重要性 | 第11页 |
| 1.4 与OATs有关的肾毒性 | 第11页 |
| 1.5 转运蛋白介导的药物-药物相互作用(DDIs) | 第11-13页 |
| 1.6 课题设计 | 第13-16页 |
| 第2章 hOAT1和hOAT3过表达稳定细胞系的建立与表征 | 第16-36页 |
| 2.1 引言 | 第16-17页 |
| 2.2 实验材料和仪器 | 第17-19页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第17-19页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第19页 |
| 2.3 实验方法 | 第19-31页 |
| 2.3.1 溶液的配置与保存 | 第19-21页 |
| 2.3.2 多聚赖氨酸包被细胞培养板 | 第21页 |
| 2.3.3 细胞培养方法 | 第21-22页 |
| 2.3.4 Flp-In系统构建过表达细胞系的方法流程 | 第22-26页 |
| 2.3.5 过表达细胞系功能表征 | 第26-31页 |
| 2.3.6 数据分析 | 第31页 |
| 2.4 结果与分析 | 第31-35页 |
| 2.4.1 hOAT1和hOAT3在细胞系中的表达情况 | 第31-32页 |
| 2.4.2 荧光底物6-CF在HEK293-hOAT1和HEK293-hOAT3中的摄取 | 第32-33页 |
| 2.4.3 hOAT1和hOAT3的时间以及饱和曲线 | 第33-34页 |
| 2.4.4 丙磺舒对6-CF在HEK293-hOAT1、HEK293-hOAT3中吸收的影响 | 第34-35页 |
| 2.5 小结 | 第35-36页 |
| 第3章 172种植物提取物与OAT1和OAT3之间的相互作用 | 第36-46页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 实验材料和仪器 | 第36-38页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第36-38页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 3.3.1 细胞接种96孔板的方法 | 第38页 |
| 3.3.2 Uptake实验方法 | 第38-39页 |
| 3.3.3 IC50的测定 | 第39页 |
| 3.3.4 数据分析 | 第39-40页 |
| 3.4 结果与分析 | 第40-45页 |
| 3.4.1 植物提取物和OAT1、OAT3之间的相互作用 | 第40-41页 |
| 3.4.2 IC50的测定 | 第41-45页 |
| 3.5 小结 | 第45-46页 |
| 第4章 大鼠体内呋塞米的药代动力学研究 | 第46-52页 |
| 4.1 引言 | 第46页 |
| 4.2 实验材料和仪器 | 第46-47页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第46-47页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第47页 |
| 4.3 实验方法 | 第47-49页 |
| 4.3.1 实验动物饲养 | 第47页 |
| 4.3.2 实验动物分组 | 第47页 |
| 4.3.3 实验药物及溶液的配置 | 第47-48页 |
| 4.3.4 给药方法与血样的采集 | 第48页 |
| 4.3.5 血浆样品的处理 | 第48页 |
| 4.3.6 反相高效液相色谱分析 | 第48页 |
| 4.3.7 数据分析 | 第48-49页 |
| 4.4 结果与分析 | 第49-50页 |
| 4.4.1 标准曲线与线性范围 | 第49页 |
| 4.4.2 灯芯草提取物和呋塞米在大鼠体内的相互作用 | 第49-50页 |
| 4.5 小结 | 第50-52页 |
| 第5章 讨论与展望 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-62页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第62-64页 |
| 致谢 | 第64-65页 |
