| 缩略词表 | 第9-11页 |
| 中文摘要 | 第11-13页 |
| ABSTRACT | 第13-14页 |
| 第一部分 文献综述和立论依据 | 第15-34页 |
| 1. 微生物湿法冶金中常用的浸矿微生物 | 第15-19页 |
| 1.1 概述 | 第15页 |
| 1.2 常见浸矿微生物的特性及其应用 | 第15-19页 |
| 1.2.1 氧化亚铁硫杆菌(Acidithiobacillus ferrooxidans,A.ferrooxidans) | 第15-16页 |
| 1.2.2 氧化硫硫杆菌(Acidithiobacillus thiooxidans,A.thiooxidans) | 第16页 |
| 1.2.3 氧化亚铁钩端螺旋菌(Leptospirillum ferrooxidans,L.ferrooxidans) | 第16-17页 |
| 1.2.4 喜温硫杆菌(Acidithiobacillus caldus,A.caldus) | 第17页 |
| 1.2.5 嗜热硫杆菌(Thermophilic thiobacillus) | 第17页 |
| 1.2.6 硫化芽孢杆菌属(硫化杆菌属,Sulfobacillus spp.) | 第17-18页 |
| 1.2.7 硫化叶菌属(Sulfolobus spp.) | 第18页 |
| 1.2.8 其它浸矿微生物菌株 | 第18页 |
| 1.2.9 混合菌群的应用 | 第18-19页 |
| 2. 含砷难处理金矿的微生物湿法冶金的国内外研究进展 | 第19-22页 |
| 2.1 概述 | 第19页 |
| 2.2 国内外含砷金矿的微生物湿法冶金的工业化程度和进展 | 第19-22页 |
| 2.2.1 国外含砷金矿的生物氧化预处理的工业生产概况 | 第19-21页 |
| 2.2.2 国内含砷金矿的生物氧化预处理的工业生产概况 | 第21-22页 |
| 3. 微生物的抗砷机制研究概况 | 第22-32页 |
| 3.1 概述 | 第22页 |
| 3.2 砷的地球物理化学概述 | 第22-23页 |
| 3.3 砷的毒性机理 | 第23-24页 |
| 3.3.1 无机砷的毒性机理及研究 | 第23页 |
| 3.3.2 有机砷的毒性机理及研究 | 第23-24页 |
| 3.4 浸矿微生物对砷的抗性研究概况 | 第24-25页 |
| 3.5 微生物对砷的抗性机制 | 第25-32页 |
| 3.5.1 ars操纵子体系 | 第25-29页 |
| 3.5.2 ArsM甲基化体系 | 第29页 |
| 3.5.3 ACR体系 | 第29-30页 |
| 3.5.4 Ycflp体系 | 第30页 |
| 3.5.5 其他砷抗性机制 | 第30-31页 |
| 3.5.6 浸矿微生物的其它抗砷机制研究概况 | 第31-32页 |
| 4. 课题的意义和立论依据 | 第32-34页 |
| 第二部分 浸矿微生物的分离、纯化、鉴定 | 第34-42页 |
| 1. 材料和方法 | 第34-40页 |
| 1.1 实验材料 | 第34页 |
| 1.1.1 多数浸矿微生物的生态环境 | 第34页 |
| 1.1.2 实验菌株 | 第34页 |
| 1.2 实验所需关键仪器 | 第34-35页 |
| 1.3 培养基 | 第35-36页 |
| 1.3.1 液体培养基 | 第35页 |
| 1.3.2 固体培养基 | 第35-36页 |
| 1.3.3 LB(Luria-Bertani)培养基 | 第36页 |
| 1.4 实验方法 | 第36-40页 |
| 1.4.1 细菌的富集培养 | 第36页 |
| 1.4.2 平板纯化 | 第36-37页 |
| 1.4.3 浸矿微生物菌株的分子生物学鉴定 | 第37-40页 |
| 2. 结果和分析 | 第40-41页 |
| 3. 讨论 | 第41-42页 |
| 第三部分 氧化亚铁硫杆菌与氧化硫硫杆菌耐受无机砷化合物的驯化试验 | 第42-54页 |
| 1. 材料和方法 | 第42-43页 |
| 1.1 实验菌株 | 第42页 |
| 1.2 实验所需材料、关键仪器 | 第42-43页 |
| 1.2.1 培养基和关键试剂 | 第42页 |
| 1.2.2 关键仪器 | 第42-43页 |
| 1.3 驯化野生菌株 | 第43页 |
| 2. 结果和分析 | 第43-52页 |
| 2.1 A.ferrooxidans和A.thiooxidans在驯化过程中的培养液的pH值的变化 | 第43-47页 |
| 2.2 A.ferrooxidans和A.thiooxidans在驯化过程中的培养液的细菌密度的变化 | 第47-52页 |
| 2.3 筛选出的抗砷能力较强的A.ferrooxidans和A.thiooxidans优势菌株 | 第52页 |
| 3. 讨论 | 第52-54页 |
| 第四部分 氧化亚铁硫杆菌与氧化硫硫杆菌的耐砷能力比较 | 第54-73页 |
| 1. 材料和方法 | 第54-56页 |
| 1.1 实验菌株 | 第54页 |
| 1.2 实验所需材料、关键仪器 | 第54-55页 |
| 1.2.1 培养基和关键试剂 | 第54页 |
| 1.2.2 关键仪器 | 第54-55页 |
| 1.3 实验方法 | 第55-56页 |
| 1.3.1 含砷培养基的pH值的测定 | 第55页 |
| 1.3.2 含砷培养基中对数期细菌总数目的测定 | 第55页 |
| 1.3.3 硫氧化速率(SOR)的测定 | 第55-56页 |
| 1.3.4 驯化菌株的菌落形态学研究 | 第56页 |
| 2. 结果和分析 | 第56-71页 |
| 2.1 含砷培养基的pH值的变化情况 | 第56-60页 |
| 2.2 含砷培养基中对数期细菌总数目的比较 | 第60-63页 |
| 2.3 含砷培养基中浸矿菌株SOR的变化比较 | 第63-69页 |
| 2.4 含砷的Waksman固体培养基中的驯化菌株的菌落形态学 | 第69-71页 |
| 3. 讨论 | 第71-73页 |
| 第五部分 氧化亚铁硫杆菌与氧化硫硫杆菌混合浸出雄黄矿和高砷难处理金矿 | 第73-83页 |
| 1. 材料和方法 | 第73-76页 |
| 1.1 实验菌株 | 第73页 |
| 1.2 矿石特征及其预处理 | 第73-74页 |
| 1.2.1 雄黄矿 | 第73-74页 |
| 1.2.2 高砷难处理金矿 | 第74页 |
| 1.3 实验所需关键仪器 | 第74-75页 |
| 1.4 培养基和关键试剂 | 第75页 |
| 1.5 浸矿试验 | 第75-76页 |
| 1.5.1 浸矿细菌细胞悬液的制备 | 第75页 |
| 1.5.2 微生物法浸出雄黄矿和高砷难处理金矿 | 第75-76页 |
| 2. 结果和分析 | 第76-81页 |
| 2.1 矿物成分分析 | 第76-77页 |
| 2.1.1 雄黄矿的成分 | 第76页 |
| 2.1.2 高砷难处理金矿的成分 | 第76-77页 |
| 2.2 砷的浸出率和Fe~(2+)的氧化速率比较 | 第77-81页 |
| 2.2.1 雄黄矿中的砷的浸出率 | 第77-78页 |
| 2.2.2 浸出雄黄矿时,Fe~(2+)的氧化速率 | 第78-79页 |
| 2.2.3 高砷难处理金矿中的砷的浸出率 | 第79-80页 |
| 2.2.4 浸出高砷难处理金矿时,Fe~(2+)的氧化速率 | 第80-81页 |
| 3. 讨论 | 第81-83页 |
| 第六部分 氧化亚铁硫杆菌与氧化硫硫杆菌的抗砷基因arsC的克隆 | 第83-95页 |
| 1. 材料和方法 | 第83-89页 |
| 1.1 实验菌株 | 第83页 |
| 1.2 培养基和关键试剂 | 第83-85页 |
| 1.2.1 培养基 | 第83-84页 |
| 1.2.2 关键试剂 | 第84-85页 |
| 1.3 实验所需关键仪器 | 第85-86页 |
| 1.4 快速微量法(改进CTAB法)提取细菌基因组DNA | 第86页 |
| 1.5 基因组DNA的浓度和纯度的测定 | 第86页 |
| 1.6 PCR扩增A.ferrooxidans和A.thiooxidans的arsC基因 | 第86-87页 |
| 1.7 DNA琼脂糖凝胶电泳检测PCR扩增产物 | 第87页 |
| 1.8 PCR扩增产物的纯化 | 第87页 |
| 1.9 PCR扩增产物的克隆、转化 | 第87-88页 |
| 1.10 arsC基因的测序和arsC基因序列分析 | 第88-89页 |
| 2. 结果和分析 | 第89-93页 |
| 2.1 PCR扩增arsC基因时,复性温度的确定 | 第89页 |
| 2.2 arsC基因的DNA琼脂糖凝胶电泳图像 | 第89-90页 |
| 2.3 arsC基因的序列及同源性分析 | 第90-93页 |
| 3. 讨论 | 第93-95页 |
| 第七部分 在不同浓度的亚砷酸盐或砷酸盐的胁迫下,氧化亚铁硫杆菌与氧化硫硫杆菌总膜蛋白表达的差异 | 第95-103页 |
| 1. 材料和方法 | 第95-98页 |
| 1.1 实验菌株 | 第95-96页 |
| 1.2 培养基和关键试剂 | 第96-97页 |
| 1.2.1 培养基 | 第96页 |
| 1.2.2 关键试剂 | 第96-97页 |
| 1.3 实验所需关键仪器 | 第97页 |
| 1.4 提取细菌的TMPs | 第97-98页 |
| 1.5 测定TMPs的含量 | 第98页 |
| 1.6 SDS-PAGE分析不同细菌菌株的TMPs的表达差异 | 第98页 |
| 2. 结果和分析 | 第98-101页 |
| 2.1 各株浸矿菌株的TMPs含量的测定 | 第98-99页 |
| 2.2 SDS-PAGE结果及TMPs的表达差异分析 | 第99-101页 |
| 3. 讨论 | 第101-103页 |
| 第八部分 结论 | 第103-105页 |
| 参考文献 | 第105-117页 |
| 攻读博士学位期间己发表或拟发表的研究成果 | 第117-118页 |
| 致谢 | 第118-120页 |
| 附录一 | 第120-121页 |
| 附录二 | 第121-122页 |
| 附录三 | 第122页 |
