| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4页 |
| 第一章 文献综述 | 第8-26页 |
| 1.1 花药发育的分子调控 | 第8-17页 |
| 1.1.1 花药发育概述 | 第8-11页 |
| 1.1.2 绒毡层和PMC细胞发育 | 第11-13页 |
| 1.1.3 花药角质与花粉璧合成 | 第13-17页 |
| 1.2 植物GPAT基因与花药聚酯合成 | 第17-20页 |
| 1.2.1 植物GPAT基因的分化 | 第17-19页 |
| 1.2.2 植物GPAT基因参与角质和木栓质合成 | 第19-20页 |
| 1.2.3 植物GPAT基因在花药发育中的作用 | 第20页 |
| 1.3 玉米雄性不育的研究和利用 | 第20-25页 |
| 1.3.1 玉米雄性不育的类型 | 第20-23页 |
| 1.3.2 玉米雄性不育基因的利用 | 第23-25页 |
| 1.4 研究意义 | 第25-26页 |
| 第二章 材料与方法 | 第26-37页 |
| 2.1 材料 | 第26页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第26页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第26页 |
| 2.2 方法 | 第26-37页 |
| 2.2.1 定位群体构建 | 第26页 |
| 2.2.2 育性鉴定 | 第26-27页 |
| 2.2.3 玉米基因组DNA提取 | 第27页 |
| 2.2.4 SSR标记筛选与聚丙烯酰氨凝胶电泳(PAGE) | 第27-30页 |
| 2.2.5 Indel标记开发与琼脂糖凝胶电泳 | 第30页 |
| 2.2.6 基因进化分析 | 第30页 |
| 2.2.7 花药半薄切片观察 | 第30-31页 |
| 2.2.8 花药超薄切片观察 | 第31页 |
| 2.2.9 花药扫描电镜观察 | 第31-32页 |
| 2.2.10 减数分裂染色体观察 | 第32页 |
| 2.2.11 总RNA的提取 | 第32页 |
| 2.1.12 cDNA合成 | 第32-33页 |
| 2.2.13 实时定量Real time PCR检测 | 第33-34页 |
| 2.2.14 RNA原位杂交分析 | 第34-35页 |
| 2.2.15 聚酯单体含量测定 | 第35-37页 |
| 第三章 结果与分析 | 第37-51页 |
| 3.1 雄性不育突变体的分离 | 第37-38页 |
| 3.2 突变体染色体行为观察 | 第38-40页 |
| 3.3 突变体表型的电镜分析 | 第40-42页 |
| 3.4 SA1基因初步定位 | 第42页 |
| 3.5 SA1基因精细定位 | 第42-43页 |
| 3.6 SA1基因克隆 | 第43-44页 |
| 3.7 等位验证 | 第44页 |
| 3.8 MS33基因进化分析 | 第44-46页 |
| 3.9 MS33基因的表达模式 | 第46-47页 |
| 3.10 ms33突变体聚酯单体成分分析 | 第47-51页 |
| 第四章 讨论 | 第51-54页 |
| 4.1 MS33基因参与玉米花粉外壁和花药角质合成 | 第51页 |
| 4.2 GPAT家族在高等植物中的多样性 | 第51-52页 |
| 4.3 MS33参与的花药相关聚酯合成途径 | 第52-53页 |
| 4.4 MS33基因在育种上的应用前景 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 个人简介 | 第66页 |
