摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
第1章 绪论 | 第11-31页 |
1.1 纳米材料荧光成像 | 第11-21页 |
1.1.1 贵金属纳米材料 | 第12-14页 |
1.1.2 量子点 | 第14-15页 |
1.1.3 上转换纳米颗粒 | 第15-17页 |
1.1.4 二氧化锰纳米材料 | 第17-18页 |
1.1.5 硅纳米材料 | 第18-21页 |
1.2 纳米生物医学 | 第21-30页 |
1.2.1 药物治疗 | 第21-25页 |
1.2.2 基因治疗 | 第25-27页 |
1.2.3 热治疗 | 第27-28页 |
1.2.4 光动力学治疗 | 第28-30页 |
1.3 本论文的研究工作 | 第30-31页 |
第2章 基于二氧化硅纳米材料的双光子荧光染料 | 第31-37页 |
2.1 前言 | 第31-32页 |
2.2 实验部分 | 第32-33页 |
2.2.1 试剂与仪器 | 第32页 |
2.2.2 双光子有机染料的合成 | 第32页 |
2.2.3 双光子有机硅源的合成 | 第32页 |
2.2.4 双光子硅纳米的制备 | 第32-33页 |
2.2.5 TPNPs细胞毒性实验 | 第33页 |
2.2.6 细胞内荧光显微成像 | 第33页 |
2.3 结果与讨论 | 第33-36页 |
2.3.1 实验设计原理 | 第33页 |
2.3.2 TPNPs形貌表征 | 第33-34页 |
2.3.3 TPNPs光学性质 | 第34-35页 |
2.3.4 TPNPs毒性实验 | 第35页 |
2.3.5 TPNPs细胞成像实验 | 第35-36页 |
2.4 小结 | 第36-37页 |
第3章 高效检测细胞和组织中抗坏血酸的双光子荧光纳米探针 | 第37-47页 |
3.1 前言 | 第37-38页 |
3.2 实验部分 | 第38-39页 |
3.2.1 试剂与仪器 | 第38页 |
3.2.2 TPNPs的制备 | 第38页 |
3.2.3 CoOOH纳米薄片的合成及TPNPs的修饰 | 第38页 |
3.2.4 缓冲溶液中AA的检测实验 | 第38-39页 |
3.2.5 CoOOH-TPNPs细胞毒性实验 | 第39页 |
3.2.6 荧光显微成像 | 第39页 |
3.3 结果与讨论 | 第39-45页 |
3.3.1 实验设计原理 | 第39-40页 |
3.3.2 纳米材料的表征 | 第40-41页 |
3.3.3 TPNPs-CoOOH的光学性质 | 第41-42页 |
3.3.4 TPNPs-CoOOH对溶液中AA的响应 | 第42页 |
3.3.5 纳米探针的选择性考察 | 第42-43页 |
3.3.6 纳米探针细胞毒性研究 | 第43页 |
3.3.7 细胞内双光子成像 | 第43-44页 |
3.3.8 组织内的双光子荧光成像 | 第44-45页 |
3.4 小结 | 第45-47页 |
第4章 通过减少谷胱甘肽含量提高光动力学治疗效果的新型二氧化锰纳米体系 | 第47-61页 |
4.1 前言 | 第47-48页 |
4.2 实验部分 | 第48-50页 |
4.2.1 试剂与仪器 | 第48页 |
4.2.2 二氧化锰纳米片的制备 | 第48-49页 |
4.2.3 Ce6-MnO_2纳米体系的制备 | 第49页 |
4.2.4 单线态氧检测实验 | 第49页 |
4.2.5 流式细胞实验 | 第49页 |
4.2.6 共聚焦激光扫描显微镜实验 | 第49页 |
4.2.7 光毒性研究 | 第49-50页 |
4.2.8 体内成像实验 | 第50页 |
4.2.9 体内PDT实验 | 第50页 |
4.3 结果与讨论 | 第50-60页 |
4.3.1 实验设计原理 | 第50-52页 |
4.3.2 二氧化锰纳米片的表征 | 第52页 |
4.3.3 实验条件优化 | 第52-53页 |
4.3.4 实验可行性验证 | 第53-54页 |
4.3.5 纳米体系的运送效率 | 第54-55页 |
4.3.6 光毒性实验 | 第55-56页 |
4.3.7 GSH对PDT治疗效果的影响 | 第56-57页 |
4.3.8 MnO_2的载药效果 | 第57-58页 |
4.3.9 Ce6-MnO_2纳米体系的适用性 | 第58-59页 |
4.3.10 Ce6-MnO_2纳米体系用于活提PDT的可行性研究 | 第59-60页 |
4.4 小结 | 第60-61页 |
结论 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-75页 |
附录A:读硕士学位期间所发表的学术论文及专利 | 第75-76页 |
致谢 | 第76页 |