摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
英文缩略词表 | 第12-13页 |
前言 | 第13-18页 |
1 食管鳞癌 | 第13页 |
2 肿瘤中针对Notch信号通路的靶向治疗 | 第13-15页 |
2.1 Notch信号通路生物学功能 | 第13-14页 |
2.2 Notch信号通路抑制剂研究进展 | 第14-15页 |
3 表观遗传学 | 第15-16页 |
4 Notch靶基因的表观遗传调控 | 第16页 |
5 本文研究内容 | 第16-18页 |
第一章 食管鳞癌细胞株中LSD1和Notch蛋白及mRNA的表达 | 第18-33页 |
引言 | 第18页 |
1 材料与方法 | 第18-29页 |
1.1 实验材料 | 第18-22页 |
1.1.1 实验设备 | 第18-19页 |
1.1.2 实验试剂 | 第19-21页 |
1.1.3 试剂配制 | 第21-22页 |
1.2 实验方法 | 第22-29页 |
1.2.1 细胞培养 | 第22-23页 |
1.2.2 Western blots实验 | 第23-26页 |
1.2.4 荧光定量PCR实验 | 第26-29页 |
2 结果 | 第29-31页 |
2.1 五株食管鳞癌细胞株中LSD1及Notch通路蛋白表达情况 | 第29-30页 |
2.2 五株食管鳞癌细胞株中LSD1 mRNA表达情况 | 第30-31页 |
3 讨论 | 第31-33页 |
第二章 新合成LSD1抑制剂对食管鳞癌细胞增殖及Notch通路相关蛋白表达的影响 | 第33-44页 |
引言 | 第33页 |
1 材料与方法 | 第33-35页 |
1.1 实验材料 | 第33-34页 |
1.1.1 实验设备 | 第33页 |
1.1.2 实验试剂 | 第33-34页 |
1.1.3 试剂配制 | 第34页 |
1.2 实验方法 | 第34-35页 |
1.2.1 细胞培养 | 第34页 |
1.2.2 细胞增殖抑制率实验 | 第34-35页 |
1.2.3 Western blots实验 | 第35页 |
2 结果 | 第35-42页 |
2.1 新合成LSD1抑制剂对食管鳞癌细胞增殖的影响 | 第35-36页 |
2.2 新合成LSD1抑制剂对食管鳞癌细胞中Notch通路相关蛋白表达影响 | 第36-39页 |
2.2.1 不同浓度LSD1抑制剂对食管鳞癌细胞中Notch通路相关蛋白的影响 | 第36-37页 |
2.2.2 LSD1抑制剂作用不同时间对食管鳞癌细胞中Notch通路相关蛋白的影响 | 第37-38页 |
2.2.3 新合成 LSD1 抑制剂对食管鳞癌细胞 ECa109 中组蛋白表达影响 | 第38-39页 |
2.3 GSI联合LSD1抑制剂对食管鳞癌细胞中蛋白表达影响 | 第39-42页 |
2.3.1 不同浓度的GSI对食管鳞癌细胞ECa109中Notch通路蛋白表达影响 | 第39-41页 |
2.3.2 GSI联合LSD1抑制剂对食管鳞癌细胞ECa109中相关蛋白表达影响 | 第41页 |
2.3.3 GSI联合LSD1抑制剂对食管鳞癌细胞ECa109中组蛋白表达影响 | 第41-42页 |
3 讨论 | 第42-44页 |
第三章 shRNA干扰LSD1表达对ECa109细胞中Notch通路蛋白表达的影响 | 第44-51页 |
引言 | 第44页 |
1 材料与方法 | 第44-47页 |
1.1 实验材料 | 第44-45页 |
1.1.1 实验试剂 | 第44页 |
1.1.2 实验仪器 | 第44-45页 |
1.1.3 试剂配制 | 第45页 |
1.2 实验方法 | 第45-47页 |
1.2.1 载有质粒菌体活化 | 第45页 |
1.2.2 质粒提取 | 第45-46页 |
1.2.3 质粒扩增 | 第46页 |
1.2.4 质粒定量 | 第46页 |
1.2.5 细胞转染 | 第46-47页 |
1.2.6 荧光显微镜下观察和照相 | 第47页 |
2 结果 | 第47-49页 |
2.1 质粒转染ECa109细胞的效率观察 | 第47-48页 |
2.2 LSD1-shRNA对ECa109细胞中LSD1及Notch3蛋白表达情况的影响 | 第48-49页 |
3 讨论 | 第49-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
综述:LSD1和Notch信号通路相互作用关系的研究进展 | 第57-70页 |
参考文献 | 第66-70页 |
个人简历 | 第70-71页 |
致谢 | 第71-72页 |