| 中文摘要 | 第3-6页 |
| 英文摘要 | 第6-9页 |
| 缩略词表 | 第15-18页 |
| 1 绪论 | 第18-60页 |
| 1.1 乙烯与番茄果实成熟调控 | 第18-32页 |
| 1.1.1 乙烯的生理功能 | 第20-21页 |
| 1.1.2 乙烯的生物合成及调控 | 第21-23页 |
| 1.1.3 乙烯的信号转导途径 | 第23-27页 |
| 1.1.4 番茄果实成熟相关突变体 | 第27-29页 |
| 1.1.5 果实成熟的信号调控模型 | 第29-30页 |
| 1.1.6 番茄果实成熟过程中的色素代谢 | 第30-32页 |
| 1.2 NAC转录因子家族的研究进展 | 第32-44页 |
| 1.2.1 NAC转录因子的命名及其家族成员 | 第33页 |
| 1.2.2 NAC转录因子的结构与分类 | 第33-35页 |
| 1.2.3 NAC转录因子的功能 | 第35-41页 |
| 1.2.4 NAC转录因子的表达调控 | 第41-42页 |
| 1.2.5 番茄中NAC转录因子的研究进展 | 第42-43页 |
| 1.2.6 展望 | 第43-44页 |
| 1.3 DEAD-box解螺酶的研究进展 | 第44-55页 |
| 1.3.1 解旋酶的分类与结构 | 第45-47页 |
| 1.3.2 DEAD-box解旋酶的发现与分类 | 第47-48页 |
| 1.3.3 DEAD-box解旋酶在植物中的功能研究进展 | 第48-52页 |
| 1.3.4 解旋酶参与胁迫响应的机制及其表达调控 | 第52-54页 |
| 1.3.5 展望 | 第54-55页 |
| 1.4 课题的提出及研究意义 | 第55-56页 |
| 1.5 课题的研究内容、技术路线及创新点 | 第56-60页 |
| 1.5.1 课题的研究内容 | 第56-58页 |
| 1.5.2 课题的技术路线 | 第58-59页 |
| 1.5.3 课题的创新点 | 第59-60页 |
| 2 番茄NAC基因的筛选与表达分析 | 第60-88页 |
| 2.1 引言 | 第60页 |
| 2.2 材料、试剂与设备 | 第60-61页 |
| 2.2.1 材料 | 第60页 |
| 2.2.2 试剂及药品 | 第60-61页 |
| 2.2.3 仪器与设备 | 第61页 |
| 2.3 实验方法 | 第61-68页 |
| 2.3.1 番茄材料的收集 | 第61-62页 |
| 2.3.2 番茄NAC基因的生物信息学分析 | 第62-63页 |
| 2.3.3 总RNA的提取 | 第63-64页 |
| 2.3.4 c DNA的合成 | 第64页 |
| 2.3.5 番茄NAC基因的引物设计及评估 | 第64-66页 |
| 2.3.6 番茄 NAC 基因的组织表达模式分析 | 第66-67页 |
| 2.3.7 番茄NAC基因响应非生物胁迫的表达模式分析 | 第67页 |
| 2.3.8 番茄NAC基因响应激素处理的表达模式分析 | 第67-68页 |
| 2.4 结果与分析 | 第68-84页 |
| 2.4.1 番茄SlNAC基因的核苷酸及蛋白序列生物信息学分析 | 第68-72页 |
| 2.4.2 番茄SlNAC4-SlNAC10 基因的定量引物设计与评估 | 第72-73页 |
| 2.4.3 番茄SlNAC4-SlNAC10 基因的组织表达模式分析 | 第73-75页 |
| 2.4.4 番茄SlNAC4-SlNAC10 基因的激素处理表达模式分析 | 第75-77页 |
| 2.4.5 番茄SlNAC4-SlNAC10 基因的非生物胁迫处理表达模式分析 | 第77-82页 |
| 2.4.6 番茄SlNAC4-SlNAC10 基因的启动子序列分析 | 第82-84页 |
| 2.5 讨论 | 第84-86页 |
| 2.6 本章小结 | 第86-88页 |
| 3 SlNAC4 基因的功能研究 | 第88-144页 |
| 3.1 引言 | 第88页 |
| 3.2 材料、试剂与设备 | 第88-100页 |
| 3.2.1 材料 | 第88-91页 |
| 3.2.2 试剂与培养基 | 第91-99页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第99-100页 |
| 3.3 实验方法 | 第100-119页 |
| 3.3.1 番茄材料的收集 | 第100页 |
| 3.3.2 总RNA的提取及c DNA的合成 | 第100页 |
| 3.3.3 基因组DNA的提取 | 第100页 |
| 3.3.4 SlNAC4 基因的克隆 | 第100-103页 |
| 3.3.5 SlNAC4 基因超表达载体的构建 | 第103-105页 |
| 3.3.6 SlNAC4 基因RNAi沉默载体的构建 | 第105-108页 |
| 3.3.7 双元质粒的农杆菌结合转移 | 第108页 |
| 3.3.8 农杆菌LBA4404 介导的番茄转基因 | 第108-110页 |
| 3.3.9 SlNAC4 基因超表达和沉默阳性转基因番茄株系的筛选 | 第110页 |
| 3.3.10 超表达和沉默转基因番茄株系SlNAC4 基因表达水平检测 | 第110页 |
| 3.3.11 果实总叶绿素及类胡萝卜素的提取 | 第110-111页 |
| 3.3.12 果实乙烯合成量的测定 | 第111页 |
| 3.3.13 定量PCR分析转基因对成熟相关基因表达的影响 | 第111-113页 |
| 3.3.14 SlNAC4 蛋白与RIN及NOR蛋白的互作研究 | 第113-117页 |
| 3.3.15 SlNAC4 转基因株系的盐胁迫耐受性分析 | 第117页 |
| 3.3.16 SlNAC4 转基因株系的干旱胁迫耐受性分析 | 第117页 |
| 3.3.17 SlNAC4 转基因株系胁迫情况下各生理指标的测定 | 第117-118页 |
| 3.3.18 定量Real-time PCR分析转基因对胁迫相关基因表达的影响 | 第118-119页 |
| 3.4 结果与分析 | 第119-137页 |
| 3.4.1 SlNAC4 基因超表达和RNAi沉默载体的构建 | 第119-120页 |
| 3.4.2 SlNAC4 转基因番茄苗系的培育与筛选 | 第120-123页 |
| 3.4.3 SlNAC4 基因的沉默抑制了番茄果实的正常成熟 | 第123-124页 |
| 3.4.4 SlNAC4 基因的沉默改变了果实色素含量及相关基因的表达 | 第124-127页 |
| 3.4.5 SlNAC4 基因的沉默抑制了乙烯的合成及乙烯相关基因的表达 | 第127-129页 |
| 3.4.6 SlNAC4 基因的沉默影响了成熟相关基因的表达 | 第129-130页 |
| 3.4.7 SlNAC4 蛋白与RIN、NOR蛋白的互作研究 | 第130-131页 |
| 3.4.8 SlNAC4 基因的沉默减少了番茄对盐胁迫的耐受性 | 第131-134页 |
| 3.4.9 SlNAC4 基因的沉默抑制了胁迫相关基因的表达 | 第134-135页 |
| 3.4.10 SlNAC4 基因的沉默减少了番茄对干旱胁迫的耐受性 | 第135-137页 |
| 3.5 讨论 | 第137-142页 |
| 3.5.1 SlNAC4 基因在番茄果实成熟中的功能 | 第137-139页 |
| 3.5.2 SlNAC4 基因在非生物胁迫响应中的功能 | 第139-142页 |
| 3.6 本章小结 | 第142-144页 |
| 4 SlDEAD31 基因的功能研究 | 第144-174页 |
| 4.1 引言 | 第144页 |
| 4.2 材料、设备与试剂 | 第144页 |
| 4.2.1 材料 | 第144页 |
| 4.2.2 试剂与培养基 | 第144页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第144页 |
| 4.3 实验方法 | 第144-151页 |
| 4.3.1 番茄材料的收集 | 第144-145页 |
| 4.3.2 番茄材料总RNA的提取及c DNA的合成 | 第145页 |
| 4.3.3 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的生物信息学分析 | 第145页 |
| 4.3.4 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的引物设计及评估 | 第145-146页 |
| 4.3.5 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的表达模式分析 | 第146页 |
| 4.3.6 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因响应非生物胁迫和激素的表达模式分析 | 第146页 |
| 4.3.7 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的克隆 | 第146页 |
| 4.3.8 SlDEAD31 基因超表达载体的构建 | 第146-148页 |
| 4.3.9 SlDEAD31 基因沉默载体的构建 | 第148-150页 |
| 4.3.10 农杆菌LBA4404 介导的番茄转基因及阳性转基因株系的筛选 | 第150-151页 |
| 4.3.11 超表达转基因株系Sl DEAD31 基因的表达水平检测 | 第151页 |
| 4.3.12 SlDEAD31 转基因株系的盐胁迫耐受性分析 | 第151页 |
| 4.3.13 SlDEAD31 转基因株系的干旱胁迫耐受性分析 | 第151页 |
| 4.3.14 SlDEAD31 转基因株系胁迫情况下各生理指标的测定 | 第151页 |
| 4.3.15 定量Real-time PCR分析转基因对胁迫相关基因表达的影响 | 第151页 |
| 4.4 结果与分析 | 第151-168页 |
| 4.4.1 DEAD-box解旋酶蛋白序列的生物信息学分析 | 第151-155页 |
| 4.4.2 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的定量引物设计与评估 | 第155页 |
| 4.4.3 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的组织表达模式分析 | 第155-156页 |
| 4.4.4 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的激素处理表达模式分析 | 第156-157页 |
| 4.4.5 SlDEAD30 和SlDEAD31 基因的非生物胁迫处理表达模式分析 | 第157-158页 |
| 4.4.6 DEAD-box基因的进化树及功能分析 | 第158-159页 |
| 4.4.7 SlDEAD31 基因超表达和RNAi沉默载体的构建 | 第159-160页 |
| 4.4.8 SlDEAD31 转基因番茄苗系的培育与筛选 | 第160-162页 |
| 4.4.9 SlDEAD31 基因的超表达增强了番茄对盐胁迫的耐受性 | 第162-165页 |
| 4.4.10 SlDEAD31 基因超表达影响了胁迫相关基因的表达 | 第165-167页 |
| 4.4.11 SlDEAD31 基因的超表达增强了番茄对干旱胁迫的耐受性 | 第167-168页 |
| 4.5 讨论 | 第168-172页 |
| 4.5.1 SlDEAD31 基因在非生物胁迫响应中的功能 | 第169-170页 |
| 4.5.2 SlDEAD31 可能参与调控多个胁迫相关基因的表达 | 第170-172页 |
| 4.6 本章小结 | 第172-174页 |
| 5 结论与展望 | 第174-178页 |
| 5.1 主要结论 | 第174-176页 |
| 5.2 展望 | 第176-178页 |
| 致谢 | 第178-180页 |
| 参考文献 | 第180-206页 |
| 附录 | 第206-208页 |
| A. 作者在攻读博士学位期间研究的其他工作 | 第206页 |
| B. 作者在攻读博士学位期间发表的论文目录 | 第206-207页 |
| C. 作者在攻读博士学位期间发明的专利 | 第207-208页 |
| D. 作者在攻读博士学位期间主持和参与的科研项目 | 第208页 |
| E. 作者在攻读博士学位期间所获奖项 | 第208页 |
