| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 引言 | 第11-23页 |
| 1.1 扁豆的概述 | 第11-12页 |
| 1.2 遗传多样性的概念及研究意义 | 第12-13页 |
| 1.3 遗传多样性的研究方法 | 第13-19页 |
| 1.3.1 形态标记 | 第14页 |
| 1.3.2 细胞学标记 | 第14-15页 |
| 1.3.3 生化标记 | 第15-16页 |
| 1.3.4 分子标记 | 第16-19页 |
| 1.3.4.1 分子标记的种类和特点 | 第16-18页 |
| 1.3.4.2 第三代分子标记—In Dels标记 | 第18-19页 |
| 1.4 分子标记在扁豆种质资源中的应用 | 第19-20页 |
| 1.5 分子标记的电泳检测技术之比较 | 第20-22页 |
| 1.6 研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-33页 |
| 2.1 实验材料 | 第23-26页 |
| 2.1.1 In Dels引物的筛选材料 | 第23页 |
| 2.1.2 遗传多样性分析材料 | 第23-25页 |
| 2.1.3 杂交扁豆的鉴定材料 | 第25页 |
| 2.1.4 主要仪器和耗材 | 第25-26页 |
| 2.1.5 主要试剂和溶液 | 第26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-33页 |
| 2.2.1 引物设计 | 第26-27页 |
| 2.2.2 DNA的提取 | 第27页 |
| 2.2.3 DNA的质量检测 | 第27-28页 |
| 2.2.4 PCR扩增 | 第28页 |
| 2.2.5 PCR扩增产物的电泳检测 | 第28-31页 |
| 2.2.5.1 琼脂糖凝胶电泳筛选引物 | 第28-29页 |
| 2.2.5.2 聚丙烯酰胺凝胶(PAGE)电泳检测 | 第29-30页 |
| 2.2.5.3 高效毛细管电泳检测 | 第30-31页 |
| 2.2.6 数据处理与分析 | 第31-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-48页 |
| 3.1 提取DNA的质量检测结果 | 第33页 |
| 3.2 PCR反应体系中退火温度的筛选 | 第33页 |
| 3.3 In Dels引物的琼脂糖凝胶电泳筛选结果 | 第33-37页 |
| 3.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳的检测结果 | 第37-41页 |
| 3.5 遗传多样性的分析结果 | 第41-48页 |
| 3.5.1 毛细管电泳检测分析结果 | 第41-45页 |
| 3.5.2 部分In Dels引物的多态性 | 第45-46页 |
| 3.5.3 21 份扁豆品种的聚类分析结果 | 第46-48页 |
| 4 讨论 | 第48-54页 |
| 4.1 扁豆DNA的提取质量 | 第48页 |
| 4.2 引物退火温度的确定 | 第48-49页 |
| 4.3 PAGE电泳与银染及判读条带 | 第49-50页 |
| 4.4 毛细管电泳技术的应用 | 第50-51页 |
| 4.5 扁豆种质遗传多样性及亲缘关系的探讨 | 第51-52页 |
| 4.6 转录组测序的In Dels原始数据与实验结果之间的对比 | 第52-53页 |
| 4.7 In Dels分子标记的应用前景 | 第53-54页 |
| 结论 | 第54-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 个人简历 | 第63页 |
