| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 符号说明 | 第7-13页 |
| 引言 | 第13-22页 |
| 0.1 转基因大豆的研究 | 第13-17页 |
| 0.1.1 转基因大豆的研究意义 | 第13页 |
| 0.1.2 转基因大豆的研究现状及进展 | 第13-14页 |
| 0.1.3 大豆遗传转化的方法研究 | 第14-17页 |
| 0.2 磷转运蛋白基因的研究 | 第17-21页 |
| 0.2.1 磷转运蛋白基因研究意义 | 第17页 |
| 0.2.2 植物磷转运蛋白基因的种类及分布 | 第17-18页 |
| 0.2.3 植物磷酸盐转运蛋白及其作用机制 | 第18-19页 |
| 0.2.4 植物磷转运蛋白基因的表达与调控 | 第19-20页 |
| 0.2.5 转磷酸盐转运蛋白基因的植物基因工程 | 第20-21页 |
| 0.3 本实验的研究目的 | 第21-22页 |
| 第1章 LePT1基因植物表达载体的构建 | 第22-44页 |
| 1.1 主要仪器设备及基本试剂 | 第22-26页 |
| 1.1.1 主要仪器设备 | 第22页 |
| 1.1.2 基本试剂 | 第22-23页 |
| 1.1.3 试剂以及缓冲液的具体配制 | 第23页 |
| 1.1.4 试剂盒以及配制的试剂 | 第23-25页 |
| 1.1.5 大肠杆菌及根癌农杆菌的培养培养基 | 第25-26页 |
| 1.2 实验材料 | 第26-27页 |
| 1.3 实验步骤及方法 | 第27-36页 |
| 1.3.1 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第27-28页 |
| 1.3.2 重组质粒的构建 | 第28-34页 |
| 1.3.3 农杆菌感受态细胞的制备 | 第34-35页 |
| 1.3.4 农杆菌感受态细胞的重组质粒的转化及鉴定 | 第35-36页 |
| 1.3.5 重组型菌种的保存 | 第36页 |
| 1.4 结果与分析 | 第36-43页 |
| 1.4.1 遗传转化载体的构建 | 第36-37页 |
| 1.4.2 目的DNA片段的克隆并与T载体连接后的分子鉴定 | 第37-39页 |
| 1.4.3 pCAMBLA2300-LePT1重组质粒的构建结果 | 第39-43页 |
| 1.5 结论 | 第43-44页 |
| 第2章 农杆菌介导LePT1基因转化大豆及其分子检测 | 第44-59页 |
| 2.1 主要仪器设备及基本试剂 | 第44-46页 |
| 2.1.1 主要仪器设备 | 第44页 |
| 2.1.2 基本试剂及其配制 | 第44-45页 |
| 2.1.3 农杆菌活化生长培养基 | 第45页 |
| 2.1.4 胚尖遗传转化培养基的配制 | 第45-46页 |
| 2.2 实验材料 | 第46-47页 |
| 2.2.1 大豆受体品种 | 第46-47页 |
| 2.2.2 重组质粒和农杆菌转化菌株 | 第47页 |
| 2.3 试验方法 | 第47-49页 |
| 2.3.1 农杆菌的活化 | 第47页 |
| 2.3.2 农杆菌介导的大豆胚尖的遗传转化 | 第47-49页 |
| 2.4 转基因植株的分子检测 | 第49-51页 |
| 2.4.1 转化后再生植株的分子检测 | 第49-50页 |
| 2.4.2 遗传转化大豆子一代植株的分子检测 | 第50-51页 |
| 2.5 结果与分析 | 第51-58页 |
| 2.5.1 农杆菌介导LePT1基因转化大豆的过程 | 第51-53页 |
| 2.5.2 农杆菌介导的大豆T0代植株及其分子检测结果 | 第53-55页 |
| 2.5.3 农杆菌介导的大豆T1代植株及其分子检测结果 | 第55-58页 |
| 2.6 讨论 | 第58页 |
| 2.7 结论 | 第58-59页 |
| 第3章 结论与展望 | 第59-61页 |
| 3.1 结论 | 第59页 |
| 3.1.1 LePT1基因植物表达载体的构建 | 第59页 |
| 3.1.2 农杆菌介导的LePT1基因对大豆植株的遗传转化 | 第59页 |
| 3.2 进一步工作方向 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-66页 |
| 致谢 | 第66-67页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第67页 |
