| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略语中英文对照表 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-27页 |
| 1.1 山楂化学成分研究进展 | 第15-20页 |
| 1.1.1 山楂化学成分概述 | 第15-16页 |
| 1.1.2 山楂化学成分分析研究现状 | 第16-20页 |
| 1.2 花色苷类成分研究进展 | 第20-27页 |
| 1.2.1 花色苷提取分离研究现状 | 第20-22页 |
| 1.2.2 花色苷类成分分析研究现状 | 第22-23页 |
| 1.2.3 花色苷类成分的药效活性 | 第23-24页 |
| 1.2.4 花色苷生物合成研究概况 | 第24-27页 |
| 第二章 不同发育期山楂果实有效成分含量变化规律研究 | 第27-42页 |
| 2.1 材料 | 第27-28页 |
| 2.1.1 样品的收集 | 第27页 |
| 2.1.2 仪器与试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 方法与结果 | 第28-40页 |
| 2.2.1 HPLC色谱条件 | 第28页 |
| 2.2.2 供试品溶液的制备 | 第28-29页 |
| 2.2.3 色谱峰的定性 | 第29-30页 |
| 2.2.4 线性关系考察 | 第30-31页 |
| 2.2.5 样品溶液制备方法考察 | 第31-34页 |
| 2.2.6 方法学考察 | 第34-38页 |
| 2.2.7 不同发育期山楂果实有效成分含量测定 | 第38-40页 |
| 2.3 讨论 | 第40-42页 |
| 2.3.1 花色苷分析方法的优化 | 第40页 |
| 2.3.2 不同发育期山楂果实有效成分含量变化规律 | 第40-42页 |
| 第三章 山楂果实花色苷生物合成途径关键酶基因的筛选 | 第42-62页 |
| 3.1 材料 | 第42-43页 |
| 3.1.1 植物材料 | 第42页 |
| 3.1.2 仪器与试剂 | 第42-43页 |
| 3.2 方法 | 第43-50页 |
| 3.2.1 山楂果实总RNA的提取及检测 | 第43-44页 |
| 3.2.2 De novo转录组高通量测序及分析 | 第44-46页 |
| 3.2.3 第一链cDNA合成 | 第46-47页 |
| 3.2.4 关键酶基因分析 | 第47-48页 |
| 3.2.5 引物设计 | 第48页 |
| 3.2.6 RT-PCR测定基因表达量 | 第48-49页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第49-50页 |
| 3.3 结果与分析 | 第50-59页 |
| 3.3.1 山楂果实总RNA提取结果 | 第50页 |
| 3.3.2 转录组高通量测序 | 第50-52页 |
| 3.3.3 花色苷合成关键酶基因分析 | 第52-55页 |
| 3.3.4 不同发育期山楂果实基因表达量分析 | 第55-58页 |
| 3.3.5 山楂果实基因表达与化学成分的关系 | 第58-59页 |
| 3.4 讨论 | 第59-62页 |
| 3.4.1 山楂果实总RNA提取 | 第59-60页 |
| 3.4.2 花色苷生物合成相关基因 | 第60-62页 |
| 第四章 山楂果实Cp3OGT基因的克隆和功能分析 | 第62-75页 |
| 4.1 材料 | 第62-63页 |
| 4.1.1 仪器 | 第62页 |
| 4.1.2 试剂 | 第62-63页 |
| 4.2 方法与结果 | 第63-73页 |
| 4.2.1 山楂果实Cp3OGT基因cDNA全长克隆 | 第63-65页 |
| 4.2.2 Cp3OGT基因cDNA的生物信息、学分析 | 第65-70页 |
| 4.2.3 重组蛋白诱导表达 | 第70页 |
| 4.2.4 酶粗提物的制备 | 第70-71页 |
| 4.2.5 Cp3OGT体外酶促反应 | 第71-72页 |
| 4.2.6 反应产物LC-MS鉴定 | 第72-73页 |
| 4.3 讨论 | 第73-75页 |
| 第五章 全文小结 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 个人简历 | 第84页 |
