摘要 | 第11-13页 |
Abstract | 第13-14页 |
第一章 文献综述 | 第15-25页 |
1.1 亚洲玉米螟概况 | 第15-16页 |
1.1.1 亚洲玉米螟分布及危害 | 第15页 |
1.1.2 亚洲玉米螟生物学特性 | 第15页 |
1.1.3 亚洲玉米螟的防治 | 第15-16页 |
1.2 高温对昆虫的影响 | 第16-17页 |
1.2.1 高温造成昆虫体内内环境改变 | 第16页 |
1.2.2 高温降低昆虫存活率和繁殖率 | 第16-17页 |
1.2.3 气温变暖对昆虫分布的影响 | 第17页 |
1.2.4 气候变暖对亚洲玉米螟化性的影响 | 第17页 |
1.3 海藻糖研究概况 | 第17-19页 |
1.3.1 海藻糖的发现 | 第17-18页 |
1.3.2 海藻糖的合成 | 第18页 |
1.3.3 海藻糖的功能 | 第18页 |
1.3.4 海藻糖在生物体抗逆性中的重要作用 | 第18-19页 |
1.3.5 海藻糖保护生物分子的机制 | 第19页 |
1.4 热激蛋白研究概况 | 第19-22页 |
1.4.1 热激蛋白的发现 | 第19-20页 |
1.4.2 热激蛋白的分类 | 第20页 |
1.4.3 热激蛋白的特点 | 第20页 |
1.4.4 热激蛋白的作用 | 第20-21页 |
1.4.5 热激蛋白与昆虫耐热性的关系 | 第21-22页 |
1.4.6 热激蛋白Hsp90的研究进展 | 第22页 |
1.5 实时荧光定量PCR的运用 | 第22-23页 |
1.6 研究目的及意义 | 第23-25页 |
第二章 短时高温对亚洲玉米螟各个虫态的影响 | 第25-32页 |
2.1 试验材料与仪器 | 第25-26页 |
2.1.1 供试昆虫 | 第25页 |
2.1.2 试验仪器 | 第25-26页 |
2.2 试验方法与数据分析 | 第26-27页 |
2.2.1 试验方法 | 第26-27页 |
2.2.2 数据分析 | 第27页 |
2.3 结果与分析 | 第27-30页 |
2.3.1 短时高温对卵孵化率的影响 | 第27页 |
2.3.2 短时高温对5龄幼虫化蛹率的影响 | 第27-28页 |
2.3.3 短时高温对蛹羽化率的影响 | 第28-29页 |
2.3.4 短时高温对成虫存活率的影响 | 第29页 |
2.3.5 各虫态LT_(50)分析 | 第29-30页 |
2.4 讨论 | 第30-32页 |
第三章 亚洲玉米螟5龄幼虫在不同温度下海藻糖含量变化 | 第32-40页 |
3.1 供试昆虫 | 第32-33页 |
3.2 试验仪器与试剂 | 第33页 |
3.3 试验试剂的配制 | 第33-34页 |
3.4 试验方法 | 第34-36页 |
3.4.1 亚洲玉米螟的称重 | 第34页 |
3.4.2 分光光度计的使用 | 第34-35页 |
3.4.3 亚洲玉米螟幼虫热激 | 第35页 |
3.4.4 亚洲玉米螟提取液制备 | 第35页 |
3.4.5 不同温度下海藻糖含量测定 | 第35-36页 |
3.5 结果与分析 | 第36-38页 |
3.5.1 海藻糖标准曲线 | 第36页 |
3.5.2 亚洲玉米螟体内海藻糖浓度的计算 | 第36页 |
3.5.3 不同温度下5龄幼虫体内海藻糖含量的变化 | 第36-38页 |
3.6 讨论 | 第38-40页 |
第四章 不同温度胁迫下亚洲玉米螟5龄幼虫Hsp90表达量分析 | 第40-52页 |
4.1 供试昆虫 | 第40页 |
4.2 试验器材与试剂 | 第40-41页 |
4.2.1 试验器材 | 第40-41页 |
4.2.2 试验所需试剂 | 第41页 |
4.3 试验方法 | 第41-45页 |
4.3.1 5龄幼虫的热激恢复 | 第41-42页 |
4.3.2 5龄幼虫总RNA提取 | 第42页 |
4.3.3 5龄幼虫cDNA合成 | 第42-43页 |
4.3.4 实时荧光定量PCR引物设计 | 第43-44页 |
4.3.5 实时荧光定量PCR标准曲线制作 | 第44-45页 |
4.3.6 实时荧光定量PCR检测基因表达量 | 第45页 |
4.3.7 荧光定量分析方法 | 第45页 |
4.4 结果与分析 | 第45-50页 |
4.4.1 5龄幼虫总RNA质量检测 | 第45-46页 |
4.4.2 实时荧光定量PCR引物特异性确认 | 第46-49页 |
4.4.3 不同温度下Hsp90基因表达量分析 | 第49-50页 |
4.5 讨论 | 第50-52页 |
第五章 结论 | 第52-54页 |
5.1 试验结果 | 第52页 |
5.2 讨论 | 第52-54页 |
参考文献 | 第54-63页 |
致谢 | 第63-64页 |