| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 1 前言 | 第8-17页 |
| 1.1 金虎尾路线简介 | 第8-10页 |
| 1.2 起源中心南美洲的“花保守性” | 第10页 |
| 1.3 “金虎尾路线”的花进化与繁育系统转换 | 第10-15页 |
| 1.4 “金虎尾路线”的传粉转变 | 第15-16页 |
| 1.5 已有研究的不足之处 | 第16-17页 |
| 2 风筝果(Hiptage benghalensis)的镜像花 | 第17-20页 |
| 2.1 亚洲特有属——风筝果属(Hiptage) | 第17-18页 |
| 2.2 风筝果特化的镜像花传粉系统 | 第18-20页 |
| 3 风筝果镜像花的雌雄异位变化及传粉转变 | 第20-28页 |
| 3.1 方法 | 第20-22页 |
| 3.1.1 实验地点 | 第20页 |
| 3.1.2 花部关键性状 | 第20页 |
| 3.1.3 访花昆虫及行为 | 第20-22页 |
| 3.1.4 数据分析 | 第22页 |
| 3.2 结果 | 第22-25页 |
| 3.2.1 花部关键性状 | 第22页 |
| 3.2.2 传粉昆虫及访花行为 | 第22-25页 |
| 3.3 讨论 | 第25-28页 |
| 3.3.1 风筝果镜像花的雌雄异位变化与传粉适应 | 第25-26页 |
| 3.3.2 风筝果不同地种群的传粉转变 | 第26-28页 |
| 4 风筝果(Hiptage benghalensis)的萼片腺体 | 第28-37页 |
| 4.1 方法 | 第28-31页 |
| 4.1.1 花萼腺体形态解剖 | 第28-29页 |
| 4.1.2 萼片腺体分泌物组成 | 第29-30页 |
| 4.1.3 花蜜高效液相色谱(HPLC)分析 | 第30页 |
| 4.1.4 气相色谱—质谱(GC-MS)分析 | 第30-31页 |
| 4.2 结果 | 第31-35页 |
| 4.2.1 萼片腺体解剖观察 | 第31页 |
| 4.2.2 萼片腺体分泌物组成 | 第31-35页 |
| 4.3 讨论 | 第35-37页 |
| 4.3.1 金虎尾科南美种群的萼片腺体 | 第35-36页 |
| 4.3.2 亚洲风筝果的萼片腺体 | 第36-37页 |
| 5 风筝果镜像花传粉生态型的分子证据 | 第37-47页 |
| 5.1 材料和方法 | 第37-40页 |
| 5.1.1 材料 | 第37页 |
| 5.1.2 改良CTAB法提取叶片总DNA | 第37-38页 |
| 5.1.3 提取DNA的药品配制 | 第38-39页 |
| 5.1.4 DNA基因片段的扩增 | 第39页 |
| 5.1.5 琼脂糖凝胶电泳检测 | 第39-40页 |
| 5.2 数据分析 | 第40页 |
| 5.3 结果 | 第40-43页 |
| 5.4 讨论 | 第43-47页 |
| 5.4.1 同一物种不同地理种群的传粉生态型 | 第43-44页 |
| 5.4.2 风筝果传粉生态型的形成 | 第44-45页 |
| 5.4.3 传粉生态型与物种分化的关系 | 第45-47页 |
| 6 结论与展望 | 第47-48页 |
| 6.1 风筝果的传粉生态型 | 第47页 |
| 6.2 展望 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 硕士研究生期间发表的学术文章 | 第53页 |
| 资助硕士论文的经费来源 | 第53-54页 |
| 致谢 | 第54页 |