| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 第一章 绪论 | 第15-22页 |
| 1.1 miRNA | 第15-16页 |
| 1.1.1 miRNA的生物合成 | 第15页 |
| 1.1.2 miRNA的作用机制 | 第15-16页 |
| 1.2 miRNA的应用 | 第16-22页 |
| 1.2.1 miRNA与肿瘤 | 第16-17页 |
| 1.2.2 miRNA与肿瘤的治疗 | 第17-18页 |
| 1.2.3 miRNA与乳腺癌 | 第18-19页 |
| 1.2.4 miRNA与卵巢癌 | 第19-22页 |
| 第二章 研究的目的、方法、方案及意义 | 第22-25页 |
| 2.1 研究目的 | 第22页 |
| 2.2 研究方法 | 第22-23页 |
| 2.3 研究设计方案 | 第23-24页 |
| 2.3.1 miR-145 对乳腺癌细胞生物学作用的研究 | 第23页 |
| 2.3.2 相关基因表达的变化 | 第23页 |
| 2.3.3 miR-100 对卵巢癌细胞生物学作用的研究 | 第23-24页 |
| 2.4 研究意义 | 第24-25页 |
| 第三章 miR-145 对乳腺癌细胞及miR-100 对卵巢癌细胞生物学特性的影响 | 第25-55页 |
| 3.1 材料 | 第25-27页 |
| 3.1.1 研究对象 | 第25页 |
| 3.1.2 试剂与耗材 | 第25-26页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第26-27页 |
| 3.2 相关溶液的配制 | 第27-29页 |
| 3.2.1 PBS的配制 | 第27页 |
| 3.2.2 L-DMEM的配制 | 第27-28页 |
| 3.2.3 MTT的配制 | 第28页 |
| 3.2.4 胰酶的配制 | 第28页 |
| 3.2.5 冻存液的配制 | 第28页 |
| 3.2.6 Western-blot相关溶液的配制 | 第28-29页 |
| 3.3 方法 | 第29-37页 |
| 3.3.1 总RNA的提取 | 第29-30页 |
| 3.3.2 RNA逆转录成cDNA | 第30-31页 |
| 3.3.3 定量PCR | 第31页 |
| 3.3.4 细胞培养 | 第31-32页 |
| 3.3.5 接种细胞 | 第32页 |
| 3.3.6 细胞转染 | 第32-34页 |
| 3.3.7 MTT法细胞增殖实验 | 第34页 |
| 3.3.8 划痕实验 | 第34页 |
| 3.3.9 Transwell迁移实验 | 第34-35页 |
| 3.3.10 总蛋白的提取 | 第35-36页 |
| 3.3.11 Western蛋白印迹 | 第36-37页 |
| 3.3.12 统计学处理 | 第37页 |
| 3.4 miR-145 对乳腺癌细胞生物学特性影响的研究结果 | 第37-45页 |
| 3.4.1 miR-145 在乳腺癌中的表达 | 第37-38页 |
| 3.4.2 乳腺癌细胞的转染效率 | 第38-40页 |
| 3.4.3 miR-145 抑制乳腺癌细胞的增殖 | 第40页 |
| 3.4.4 miR-145 对乳腺癌细胞迁移能力的影响 | 第40-43页 |
| 3.4.5 TGF-β1 蛋白的表达 | 第43-44页 |
| 3.4.6 TGF-β1 mRNA的表达 | 第44-45页 |
| 3.5 miR-100 对卵巢癌细胞影响的研究结果 | 第45-48页 |
| 3.5.1 卵巢癌细胞的转染效率 | 第45页 |
| 3.5.2 miR-100 抑制卵巢癌细胞的增殖 | 第45-46页 |
| 3.5.3 miR-100 抑制卵巢癌细胞的迁移 | 第46-48页 |
| 3.5.4 STAT3蛋白的表达 | 第48页 |
| 3.6 讨论 | 第48-55页 |
| 3.6.1 miR-145 对乳腺癌细胞生物学特性影响的结果讨论 | 第48-52页 |
| 3.6.2 miR-100 对卵巢癌细胞生物学特性影响的结果讨论 | 第52-55页 |
| 第四章 结论与展望 | 第55-57页 |
| 4.1 结论 | 第55页 |
| 4.2 展望 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-64页 |
| 致谢 | 第64-66页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第66页 |
