| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 符号说明 | 第9-13页 |
| 引言 | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-23页 |
| 1. 瘤胃产甲烷菌及甲烷的生成 | 第14-15页 |
| 1.1 产甲烷菌 | 第14页 |
| 1.2 瘤胃甲烷生成 | 第14-15页 |
| 2. 瘤胃甲烷排放调控 | 第15-21页 |
| 2.1 动物调控 | 第15-16页 |
| 2.1.1 减少存栏数量,提高生产力 | 第15页 |
| 2.1.2 遗传选择 | 第15-16页 |
| 2.2 日粮调控 | 第16-20页 |
| 2.2.1 改变日粮结构 | 第16页 |
| 2.2.2 添加脂类物质 | 第16-17页 |
| 2.2.3 添加离子载体和有机酸 | 第17-18页 |
| 2.2.4 添加卤代化合物 | 第18页 |
| 2.2.5 添加植物次生化合物 | 第18-19页 |
| 2.2.5 添加他汀类物质 | 第19-20页 |
| 2.3 微生物调控 | 第20-21页 |
| 2.3.1 驱除原虫 | 第20页 |
| 2.3.2 直接饲喂微生物 | 第20-21页 |
| 2.3.3 免疫调控 | 第21页 |
| 3. 存在的问题及本研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 3.1 存在的问题 | 第21-22页 |
| 3.2 本研究的目的和意义 | 第22-23页 |
| 3.2.1 研究目的 | 第22页 |
| 3.2.2 研究意义 | 第22-23页 |
| 第二章: 试验研究 | 第23-49页 |
| 1 材料与方法 | 第23-28页 |
| 1.1 试验动物、日粮与饲养管理 | 第23页 |
| 1.1.1 试验动物 | 第23页 |
| 1.1.2 试验材料 | 第23页 |
| 1.1.3 饲养管理 | 第23页 |
| 1.2 实验设计 | 第23-25页 |
| 1.3 样品采集 | 第25页 |
| 1.3.1 粪样采集 | 第25页 |
| 1.3.2 尿样采集 | 第25页 |
| 1.3.3 血液采集 | 第25页 |
| 1.3.4 瘤胃内容物采集 | 第25页 |
| 1.4 样品分析方法 | 第25-26页 |
| 1.5 瘤胃微生物总DNA的提取 | 第26页 |
| 1.6 16S rRNA的PCR扩增和焦磷酸测序 | 第26页 |
| 1.7 生物信息学分析 | 第26-27页 |
| 1.8 计算公式 | 第27-28页 |
| 1.9 数据统计分析 | 第28页 |
| 2 结果 | 第28-41页 |
| 2.1 红曲米对山羊采食量及营养物质消化率的影响 | 第28-29页 |
| 2.2 红曲米对山羊氮代谢的影响 | 第29-30页 |
| 2.3 红曲米对山羊能量代谢及甲烷排放的影响 | 第30-31页 |
| 2.4 红曲米对山羊脂质代谢的影响 | 第31-32页 |
| 2.5 红曲米对山羊瘤胃发酵的影响 | 第32页 |
| 2.6 红曲米对山羊瘤胃古菌多样性的影响 | 第32-41页 |
| 2.6.1 各样品测序深度和Alpha多样性分析 | 第32-34页 |
| 2.6.2 不同分类水平上的物种组成分析 | 第34-40页 |
| 2.6.3 PCoA聚类分析 | 第40页 |
| 2.6.4 共享属分析 | 第40-41页 |
| 3. 讨论 | 第41-49页 |
| 3.1 红曲米对山羊采食量、营养物质消化率和甲烷排放量的影响 | 第41-43页 |
| 3.2 红曲米对山羊能量代谢和氮代谢的影响 | 第43-44页 |
| 3.3 红曲米对山羊脂质代谢和瘤胃发酵的影响 | 第44-45页 |
| 3.4 红曲米对山羊瘤胃古菌多样性的影响 | 第45-49页 |
| 第三章 结论及创新点 | 第49-50页 |
| 1 结论 | 第49页 |
| 2 创新点 | 第49页 |
| 3 需要进一步研究的问题 | 第49-50页 |
| 参考文献 | 第50-57页 |
| 致谢 | 第57页 |