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细胞微囊化缓释LeftyA用于肺纤维化模型的治疗研究

摘要第3-4页
Abstract第4页
第1章 绪论第8-20页
    1.1 课题研究背景和意义第8页
    1.2 肺纤维化研究现状第8-12页
        1.2.1 肺纤维化概念及其致病机理第8-9页
        1.2.2 肺纤维化的治疗方法和策略第9-10页
        1.2.3 EMT 与肺纤维化的关系第10-12页
    1.3 Lefty 蛋白在器官纤维化中的运用第12-15页
        1.3.1 Lefty 蛋白与 TGF-beta 信号通路第12-13页
        1.3.2 Lefty 蛋白在 EMT 过程中的研究第13-14页
        1.3.3 Lefty 蛋白与 ECM、MMP 的关系第14-15页
    1.4 细胞微囊化缓释技术与疾病治疗第15-19页
        1.4.1 细胞微囊化缓释技术第15-17页
        1.4.2 细胞微囊化与疾病治疗第17-19页
    1.5 本课题主要研究内容第19-20页
        1.5.1 微囊缓释 LeftyA 治疗小鼠肺纤维化的有效性研究第19页
        1.5.2 微囊缓释 LeftyA 治疗肺纤维化的机理研究第19页
        1.5.3 技术路线第19-20页
第2章 实验材料和方法第20-28页
    2.1 材料第20-23页
        2.1.1 细胞系和实验动物第20页
        2.1.2 主要试剂第20-21页
        2.1.3 主要溶液配制方法第21-22页
        2.1.4 实验仪器第22-23页
    2.2 实验方法第23-27页
        2.2.1 细胞培养第23页
        2.2.2 肺泡上皮细胞 EMT 诱导第23页
        2.2.3 小鼠肺纤维化模型制备第23页
        2.2.4 海藻酸钠细胞包覆第23-24页
        2.2.5 蛋白免疫印迹(western blot)第24页
        2.2.6 实时定量 PCR 技术分析特定基因表达量第24-25页
        2.2.7 组织石蜡切片染色第25页
        2.2.8 免疫组织化学技术检测金属蛋白酶表达第25-26页
        2.2.9 细胞免疫荧光技术检测特定蛋白表达第26页
        2.2.10 线粒体膜电位检测第26页
        2.2.11 扫描电子显微镜技术观察细胞微囊超微结构第26页
        2.2.12 酶联免疫法检测 LeftyA第26-27页
    2.3 本章小结第27-28页
第3章 微囊缓释 LeftyA 治疗小鼠肺纤维化的有效性研究第28-42页
    3.1 引言第28页
    3.2 工程化 HEK293 细胞的微囊化包覆研究第28-31页
        3.2.1 工程化 HEK293 细胞的鉴定第28-29页
        3.2.2 海藻酸钠细胞微囊制作及表征第29-31页
    3.3 博来霉素诱导小鼠肺纤维化模型的研究第31-32页
    3.4 微囊化缓释 LeftyA 对小鼠肺纤维化治疗的有效性研究第32-38页
        3.4.1 血清中缓释的 LeftyA 含量分析第32-33页
        3.4.2 缓释治疗后的组织形态学分析第33-35页
        3.4.3 缓释 LeftyA 对结缔组织生长因子和胶原基因的影响第35页
        3.4.4 缓释 LeftyA 对组织中金属蛋白酶表达量的影响第35-38页
    3.5 讨论第38-41页
    3.6 本章小结第41-42页
第4章 微囊缓释 LeftyA 治疗肺纤维化的机制研究第42-53页
    4.1 引言第42页
    4.2 肺泡上皮细胞纤维化模型的研究第42-45页
    4.3 LeftyA 对肺上皮细胞纤维化模型的抑制和逆转研究第45-46页
    4.4 LeftyA 对促进肺泡上皮细胞纤维化模型的凋亡研究第46-49页
        4.4.1 LeftyA 促进纤维化模型细胞的凋亡第46-48页
        4.4.2 LeftyA 对纤维化模型细胞的线粒体膜电位影响第48页
        4.4.3 LeftyA 对纤维化模型细胞的 Caspase3/7 活性影响第48-49页
    4.5 讨论第49-52页
    4.6 本章小结第52-53页
结论第53-54页
展望第54-55页
参考文献第55-62页
攻读学位期间发表的学术论文第62-64页
致谢第64页

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