| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 1. 中文摘要 | 第7-9页 |
| 2. Abstract | 第9-10页 |
| 3. 前言 | 第11-14页 |
| 4. 材料和方法 | 第14-26页 |
| 4.1 实验材料 | 第14-17页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第14页 |
| 4.1.2 主要试剂和来源 | 第14-16页 |
| 4.1.3 仪器 | 第16-17页 |
| 4.2 实验方法 | 第17-25页 |
| 4.2.1 动物模型 | 第17-18页 |
| 4.2.2 免疫磁珠两步法提取CD4+ CD25+调节性T细胞 | 第18页 |
| 4.2.3 中性粒细胞的原代培养以及与Treg细胞共培养 | 第18-19页 |
| 4.2.4 神经功能行为学评价 | 第19-20页 |
| 4.2.5 TTC染色测定脑梗死体积 | 第20页 |
| 4.2.6 Evans Blue渗透进入脑组织定量检测 | 第20页 |
| 4.2.7 血红蛋白浓度分光光度测量定量脑出血量 | 第20-21页 |
| 4.2.8 总蛋白的提取 | 第21页 |
| 4.2.9 考马斯亮蓝法蛋白定量 | 第21-22页 |
| 4.2.11 Western印迹蛋白条带积分光密度分析 | 第22页 |
| 4.2.12 明胶酶谱(gelatin zymography) | 第22-23页 |
| 4.2.13 组织免疫荧光化学 | 第23页 |
| 4.2.14 免疫组化检测脑梗死体积 | 第23-24页 |
| 4.2.15 中性粒细胞来源的MMP-9的体内实验分析 | 第24-25页 |
| 4.3 统计学分析 | 第25-26页 |
| 5. 实验结果 | 第26-44页 |
| 5.1. 调节性T细胞输注移植可以减轻缺血性脑卒中后tPA溶栓治疗导致的出血转换 | 第26-35页 |
| 5.1.1 小鼠缺血性脑卒中再灌注模型的建立 | 第26页 |
| 5.1.2 CD4+CD25+Treg细胞提纯和功能鉴定 | 第26-27页 |
| 5.1.3 调节性T细胞输注移植可明显减轻缺血性脑卒中后tPA溶栓后出血转换 | 第27-28页 |
| 5.1.4 调节性T细胞输注移植可减轻tPA溶栓后出血转换导致的脑损伤 | 第28-29页 |
| 5.1.5 Treg改善了缺血性脑卒中及tPA溶栓后出血转换后的神经功能恢复并具有长时程的神经保护用 | 第29-30页 |
| 5.1.6 Treg细胞输注移植可减少tPA溶栓后出血转换过程中的血脑屏障破坏 | 第30-32页 |
| 5.1.7 Treg细胞输注移植有助于保护tPA溶栓后出血转换过程中的血脑屏障紧密连接相关蛋白的完整性 | 第32-34页 |
| 5.1.8 Treg治疗通过抑制MMP-9的升高对tPA溶栓后出血转换起到了抑制作用 | 第34-35页 |
| 5.2 调节性T细胞输注移植对血脑屏障保护作用机制的探讨 | 第35-44页 |
| 5.2.1 体外实验中Tregs通过PD-L1/PD-1抑制中性粒细胞源性MMP-9 | 第35-38页 |
| 5.2.2 整体模型上进一步证明了PD-L1介导缺血性脑卒中后Tregs对neutrophil源性MMP-9的抑制作用 | 第38-39页 |
| 5.2.3 PD-L1是缺血性脑卒中后Tregs输注移植有效保护血脑屏障完整性机制中的主要靶点 | 第39-42页 |
| 5.2.4 使用PD-L1抗体处理或PD-L1敲除小鼠则废除了Tregs的神经保护作用 | 第42-44页 |
| 6. 小结 | 第44-45页 |
| 7. 讨论 | 第45-49页 |
| 8. 综述 | 第49-59页 |
| 9. 参考文献 | 第59-70页 |
| 10. 致谢 | 第70-71页 |
| 11. 附录 | 第71-72页 |
