中文摘要 | 第8-11页 |
ABSTRACT | 第11-13页 |
符号说明 | 第14-16页 |
前言 | 第16-24页 |
1.1 结肠癌的侵袭与转移 | 第16-17页 |
1.2 趋化因子与肿瘤定向迁移 | 第17-19页 |
1.3 CXCR4/CXCL12生物轴与结肠癌关系 | 第19-24页 |
1.3.1 CXCR4/CXCL12生物轴对结肠癌的影响 | 第19-21页 |
1.3.2 CXCR4/CXCL12生物轴所激活的信号通路 | 第21-24页 |
1 实验材料 | 第24-32页 |
1.1 细胞因子 | 第24页 |
1.2 细胞株及其培养 | 第24页 |
1.3 试剂 | 第24-26页 |
1.4 试剂配制 | 第26-30页 |
1.4.1 细胞培养用试剂 | 第26-27页 |
1.4.2 明胶酶谱试剂配制 | 第27-28页 |
1.4.3 Western blotting试剂配制 | 第28-30页 |
1.5 仪器设备 | 第30-32页 |
2 实验方法 | 第32-38页 |
2.1 CXCR4在不同结肠肿瘤细胞中的表达 | 第32-34页 |
2.1.1 引物的合成 | 第32页 |
2.1.2 RNA的提取 | 第32-33页 |
2.1.3 反转录得到cDNA | 第33页 |
2.1.4 实时荧光定量FCR | 第33-34页 |
2.2 siRNA沉默CXCR4的表达 | 第34页 |
2.3 CXCL12对结肠肿瘤细胞HT-29增殖的影响 | 第34页 |
2.4 CXCL12对结肠肿瘤细胞HT-29迁移和侵袭的影响 | 第34-35页 |
2.5 CXCL12对MMP-2,MMP-9分泌的影响 | 第35-36页 |
2.6 CXCL12对β-catenin的入核影响 | 第36页 |
2.7 Western blotting检测CXCL12对相关蛋白表达的影响 | 第36-37页 |
2.8 统计学数据分析 | 第37-38页 |
3 实验结果 | 第38-46页 |
3.1 CXCR4的表达 | 第38-39页 |
3.2 CXCL12对结肠肿瘤细胞HT-29增殖的影响 | 第39-40页 |
3.3 CXCL12对结肠肿瘤细胞HT-29迁移能力的影响 | 第40-41页 |
3.4 CXCL12对结肠肿瘤细胞HT-29侵袭能力的影响 | 第41-42页 |
3.5 CXCL12对HT-29细胞MMP-2、MMP-9分泌的影响 | 第42-43页 |
3.6 CXCR4/CXCL12生物轴激活HT-29细胞内PI3K/AKT/mTOR信号通路 | 第43页 |
3.7 CXCR4/CXCL12生物轴激活HT-29细胞内RAS/RAF/MEK/ERK信号通路 | 第43-44页 |
3.8 CXCL12激活Wnt信号通路 | 第44页 |
3.9 CXCL12促进β-catenin入核 | 第44-46页 |
4 讨论 | 第46-49页 |
5 结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-57页 |
致谢 | 第57-58页 |
攻读硕士学位期间发表论文 | 第58-59页 |
附件 | 第59-65页 |