| 摘要 | 第5-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-20页 |
| 1.1 丹参研究概况 | 第11-15页 |
| 1.1.1 丹参形态特征以及生长分布 | 第11页 |
| 1.1.2 丹参的药用价值 | 第11-13页 |
| 1.1.3 干旱胁迫对丹参种植的影响 | 第13-14页 |
| 1.1.4 丹参的种植方法 | 第14-15页 |
| 1.1.5 丹参的市场需求及前景 | 第15页 |
| 1.2 启动子研究概况 | 第15-18页 |
| 1.2.1 植物启动子的结构和功能 | 第16-17页 |
| 1.2.2 启动子克隆方法 | 第17-18页 |
| 1.3 psbD基因研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3.1 psbD基因与光系统Ⅱ的关系 | 第18页 |
| 1.3.2 psbD基因的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.3.3 psbD研究中存在的问题及发展前景 | 第19页 |
| 1.4 本研究的目的与意义 | 第19-20页 |
| 第二章 丹参psbD基因及 5’端缺失启动子克隆 | 第20-31页 |
| 2.1 试验材料、仪器、试剂与方法 | 第20-23页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第20页 |
| 2.1.2 试验试剂 | 第20-22页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第22-23页 |
| 2.2 试验方法 | 第23-27页 |
| 2.2.1 丹参叶绿体DNA的提取 | 第23页 |
| 2.2.2 丹参psbD基因及系列缺失启动子的克隆 | 第23-27页 |
| 2.2.3 丹参psbD基因启动子的生物信息学分析 | 第27页 |
| 2.3 结果分析 | 第27-31页 |
| 2.3.1 cpDNA提取 | 第27页 |
| 2.3.2 丹参psbD基因的克隆 | 第27-28页 |
| 2.3.3 丹参psbD基因全长启动子的克隆 | 第28页 |
| 2.3.4 丹参 psbD 基因启动子的生物信息学分析 | 第28-31页 |
| 第三章 丹参psbD基因启动子表达分析 | 第31-42页 |
| 3.1 试验材料、仪器、试剂 | 第31页 |
| 3.1.1 试验用植物材料 | 第31页 |
| 3.1.2 本章试验试剂 | 第31页 |
| 3.1.3 本章试验仪器 | 第31页 |
| 3.2 试验方法 | 第31-37页 |
| 3.2.1 psbD基因全长启动子及 5’缺失启动子与pCAMBIA1304融合质粒构建 | 第31-34页 |
| 3.2.2 农杆菌感受态制作 | 第34页 |
| 3.2.3 瞬时转化烟草 | 第34-35页 |
| 3.2.4 GUS化学组织染色 | 第35页 |
| 3.2.5 丹参总RNA的提取 | 第35页 |
| 3.2.6 反转录cDNA | 第35-36页 |
| 3.2.7 实时定量PCR | 第36-37页 |
| 3.3 试验结果 | 第37-42页 |
| 3.3.1 psbD基因全长启动子及 5’缺失启动子与pCAMBIA1304融合质粒构建 | 第37-38页 |
| 3.3.2 重组质粒双酶切验证 | 第38-39页 |
| 3.3.3 总RNA提取 | 第39页 |
| 3.3.4 瞬时转化烟草叶片的GUS组织染色 | 第39-40页 |
| 3.3.5 转烟草叶片GUS基因表达量实时定量PCR分析 | 第40-42页 |
| 第四章 讨论 | 第42-43页 |
| 第五章 结论与展望 | 第43-44页 |
| 5.1 主要结论 | 第43页 |
| 5.2 研究展望 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 附录 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 作者简介 | 第52页 |
