| 缩略词表 | 第5-7页 |
| 中文摘要 | 第7-9页 |
| 英文摘要 | 第9-11页 |
| 前言 | 第12-15页 |
| 第一部分 去神经支配对小鼠缺血后肢血管生成及骨骼肌纤维重塑的影响 | 第15-32页 |
| 一、材料和方法 | 第15-23页 |
| 1. 材料 | 第15-17页 |
| 1.1 实验动物 | 第15页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第15-16页 |
| 1.3 主要实验仪器 | 第16-17页 |
| 2. 方法 | 第17-23页 |
| 2.1 主要溶液的配制 | 第17页 |
| 2.2 动物模型构建 | 第17-18页 |
| 2.2.1 小鼠后肢缺血模型构建 | 第17-18页 |
| 2.2.2 小鼠后肢缺血+去神经支配模型构建 | 第18页 |
| 2.3 患肢缺血评估 | 第18-19页 |
| 2.4 缺血肢体取材 | 第19页 |
| 2.5 组织学检查 | 第19-23页 |
| 2.5.1 石蜡包埋切片制作 | 第19页 |
| 2.5.2 HE染色 | 第19-20页 |
| 2.5.3 免疫组化染色 | 第20-21页 |
| 2.5.4 肌球蛋白ATP酶染色 | 第21页 |
| 2.5.5 ELISA检测 | 第21-23页 |
| 2.6 统计学分析 | 第23页 |
| 二、结果 | 第23-29页 |
| 1. 患肢缺血情况 | 第23-24页 |
| 2. 患肢腓肠肌重量测定 | 第24-25页 |
| 3. 组织学检查结果 | 第25-29页 |
| 3.1 HE染色结果 | 第25-26页 |
| 3.2 免疫组化染色结果 | 第26-27页 |
| 3.2.1 PCNA染色结果 | 第26-27页 |
| 3.2.2 CD31染色结果 | 第27页 |
| 3.3 肌球蛋白ATP酶染色结果 | 第27-28页 |
| 3.4 ELISA检测肌肉组织NGF和VEGF表达 | 第28-29页 |
| 三、讨论 | 第29-31页 |
| 四、结论 | 第31-32页 |
| 第二部分 NGF基因转染对小鼠缺血后肢血管生成和骨骼肌纤维重塑的影响 | 第32-47页 |
| 一、材料和方法 | 第32-37页 |
| 1. 材料 | 第32-34页 |
| 1.1 实验动物 | 第32页 |
| 1.2 主要实验试剂 | 第32-33页 |
| 1.3 主要实验仪器及耗材 | 第33-34页 |
| 2. 方法 | 第34-37页 |
| 2.1 NGF和VEGF-ATF质粒的制备 | 第34-36页 |
| 2.1.1 主要溶液的配制 | 第34-35页 |
| 2.1.2 大肠杆菌感受态细胞的制备 | 第35页 |
| 2.1.3 转化 | 第35页 |
| 2.1.4 质粒的大量提取和纯化 | 第35-36页 |
| 2.2 小鼠后肢缺血模型构建 | 第36-37页 |
| 2.3 NGF及VEGF-ATF基因转染 | 第37页 |
| 2.4 患肢功能评估及取材 | 第37页 |
| 2.5 组织学检查 | 第37页 |
| 2.6 统计学分析 | 第37页 |
| 二、结果 | 第37-43页 |
| 1. 患肢功能测评 | 第37-38页 |
| 2. 患肢腓肠肌重量测定 | 第38-39页 |
| 3. 组织学检查结果 | 第39-43页 |
| 3.1 HE染色结果 | 第39-40页 |
| 3.2 免疫组化染色结果 | 第40-42页 |
| 3.2.1 PCNA染色结果 | 第40-41页 |
| 3.2.2 CD31染色结果 | 第41-42页 |
| 3.3 肌球蛋白ATP酶染色结果 | 第42-43页 |
| 3.4 ELISA检测肌肉组织NGF、VEGF表达 | 第43页 |
| 三、讨论 | 第43-46页 |
| 四、结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-54页 |
| 综述：神经因素在治疗性血管生成中作用的研究进展 | 第54-68页 |
| 一、神经发育与血管再生 | 第54页 |
| 二、神经营养因子与血管生成 | 第54-57页 |
| 1. NGF与血管生成 | 第55-56页 |
| 2. 其它NT与血管生成 | 第56-57页 |
| 三、神经肽Y与血管生成 | 第57-58页 |
| 四、Netrins与血管生成 | 第58-59页 |
| 五、神经干细胞与血管生成 | 第59-60页 |
| 六、问题与展望 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 个人简历 | 第68-69页 |
| 发表文章 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
