| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 缩略词 | 第11-12页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-24页 |
| 1.1 低氧对人和陆生动物的影响 | 第12-13页 |
| 1.2 高氧对人和陆生动物的影响 | 第13页 |
| 1.3 氧对鱼类的影响 | 第13-17页 |
| 1.3.1 溶解氧的功能 | 第14页 |
| 1.3.2 溶解氧对鱼类心血管机能的影响 | 第14-15页 |
| 1.3.3 溶解氧对鱼类其他器官机能的影响 | 第15-17页 |
| 1.4 模式生物—斑马鱼 | 第17-18页 |
| 1.5 斑马鱼心血管发育 | 第18-24页 |
| 1.5.1 斑马鱼心脏发育过程 | 第18-19页 |
| 1.5.2 斑马鱼血管发育过程 | 第19-21页 |
| 1.5.3 斑马鱼心血管发育研究现状 | 第21-24页 |
| 第2章 绪论 | 第24-26页 |
| 2.1 选题背景与意义 | 第24页 |
| 2.2 研究内容与技术路线 | 第24-26页 |
| 2.2.1 研究内容 | 第24-25页 |
| 2.2.2 技术路线 | 第25-26页 |
| 第3章 实验动物及方法 | 第26-40页 |
| 3.1 实验动物、仪器及试剂 | 第26-31页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第26页 |
| 3.1.2 质粒图谱 | 第26-27页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第27-28页 |
| 3.1.4 主要试剂 | 第28页 |
| 3.1.5 主要试剂配制 | 第28-31页 |
| 3.2 实验方法 | 第31-40页 |
| 3.2.1 溶解氧条件的制备 | 第31页 |
| 3.2.2 观测胚胎外部形态 | 第31-32页 |
| 3.2.3 cDNA的合成 | 第32-33页 |
| 3.2.4 PCR扩增目的基因 | 第33-34页 |
| 3.2.5 目的片段的克隆 | 第34-35页 |
| 3.2.6 重组质粒的提取及纯化 | 第35页 |
| 3.2.7 地高辛探针的合成 | 第35-36页 |
| 3.2.8 整胚原位杂交 | 第36-37页 |
| 3.2.9 qPCR检测 | 第37-40页 |
| 第4章 实验结果与讨论 | 第40-62页 |
| 4.1 低氧和高氧对胚胎形态发育的影响 | 第40-49页 |
| 4.1.1 胚胎发育对低氧和高氧敏感的时间窗 | 第40页 |
| 4.1.2 低氧和高氧对胚胎存活率的影响 | 第40-41页 |
| 4.1.3 低氧和高氧对胚胎外部形态的影响 | 第41页 |
| 4.1.4 低氧和高氧对胚胎体长的影响 | 第41-42页 |
| 4.1.5 低氧和高氧对胚胎卵黄球(YB)及卵黄延伸(YE)的影响 | 第42-44页 |
| 4.1.6 低氧和高氧对胚胎眼径的影响 | 第44页 |
| 4.1.7 低氧和高氧对胚胎心脏形态的影响 | 第44-45页 |
| 4.1.8 低氧和高氧对胚胎血管形态的影响 | 第45-49页 |
| 4.2 低氧和高氧对胚胎心脏、血管发育相关基因表达的影响 | 第49-56页 |
| 4.2.1 总RNA的提取 | 第49页 |
| 4.2.2 目的基因的扩增 | 第49页 |
| 4.2.3 阳性克隆筛选及鉴定 | 第49-50页 |
| 4.2.4 DIG标记RNA探针的合成 | 第50-51页 |
| 4.2.5 心脏相关基因的整胚原位杂交 | 第51页 |
| 4.2.6 血管相关基因的整胚原位杂交 | 第51-54页 |
| 4.2.7 qPCR检测心脏、血管发育相关基因的表达 | 第54-56页 |
| 4.3 讨论 | 第56-62页 |
| 4.3.1 低氧和高氧对胚胎形态发育的影响 | 第56-57页 |
| 4.3.2 低氧和高氧对胚胎心脏发育的影响 | 第57-58页 |
| 4.3.3 低氧和高氧对胚胎血管发育的影响 | 第58-62页 |
| 第5章 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 致谢 | 第74页 |
