| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-15页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 研究现状、成果 | 第15页 |
| 研究目的，方法 | 第15-17页 |
| 一、RNA干扰下调TLR4基因在预防颈动脉球囊损伤所致血管狭窄中的作用 | 第17-53页 |
| 1.1 对象和方法 | 第17-33页 |
| 1.1.1 对象 | 第17-24页 |
| 1.1.2 方法 | 第24-33页 |
| 1.2 结果 | 第33-43页 |
| 1.2.1 模型建立情况 | 第33-34页 |
| 1.2.2 病理分析结果 | 第34-39页 |
| 1.2.3 免疫组化情况 | 第39页 |
| 1.2.4 提取RNA的定性及各目的基因mRNA的定量 | 第39-41页 |
| 1.2.5 各目的基因蛋白表达的定量 | 第41-42页 |
| 1.2.6 各组血清中IL-6 及TNF-α 的表达水平 | 第42-43页 |
| 1.3 讨论 | 第43-51页 |
| 1.3.1 再狭窄概况及研究背景 | 第43-44页 |
| 1.3.2 TLR4信号通路 | 第44-46页 |
| 1.3.3 再狭窄动物模型 | 第46-49页 |
| 1.3.4 TLR4信号通路在再狭窄模型病理生理过程中的作用 | 第49-51页 |
| 1.4 小结 | 第51-53页 |
| 二、shRNA-TLR4质粒稳转人主动脉血管平滑肌细胞系对细胞增殖、迁移能力的抑制效应及其与吡格列酮预处理的比较 | 第53-79页 |
| 2.1 对象和方法 | 第53-60页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第53-54页 |
| 2.1.2 实验方法 | 第54-60页 |
| 2.2 结果 | 第60-69页 |
| 2.2.1 正常培养的HaVSMC | 第60页 |
| 2.2.2 最佳刺激时间的确定 | 第60-61页 |
| 2.2.3 质粒稳定转染进入细胞系的验证 | 第61页 |
| 2.2.4 抑制效率的确定 | 第61-62页 |
| 2.2.5 各组细胞中TLR4 mRNA表达量 | 第62页 |
| 2.2.6 各组细胞中目的基因蛋白表达量 | 第62-63页 |
| 2.2.7 各组细胞增殖能力 | 第63-65页 |
| 2.2.8 各组细胞所处细胞周期分布 | 第65-66页 |
| 2.2.9 各组细胞迁移能力 | 第66-69页 |
| 2.3 讨论 | 第69-78页 |
| 2.3.1 血管平滑肌细胞炎症增殖模型 | 第69页 |
| 2.3.2 shRNA-TLR4对细胞增殖、迁移的影响 | 第69页 |
| 2.3.3 噻唑二烷酮 | 第69-71页 |
| 2.3.4 RNA干扰 | 第71-78页 |
| 2.4 小结 | 第78-79页 |
| 全文结论 | 第79-80页 |
| 论文创新点 | 第80页 |
| 局限性 | 第80-81页 |
| 参考文献 | 第81-90页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第90-91页 |
| 综述 | 第91-110页 |
| 综述一.TLR4介导的信号通路与介入治疗后再狭窄的形成 | 第91-102页 |
| 综述一参考文献 | 第98-102页 |
| 综述二.吡格列酮在心血管系统疾病中的应用及研究 | 第102-110页 |
| 综述二参考文献 | 第106-110页 |
| 致谢 | 第110页 |
