致谢 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-11页 |
第一章 绪论 | 第17-28页 |
1.1 铅暴露的主要来源 | 第17-18页 |
1.1.1 食物 | 第17-18页 |
1.1.2 大气 | 第18页 |
1.1.3 水 | 第18页 |
1.1.4 家居装饰材料及生活用品 | 第18页 |
1.1.5 学习玩具用品 | 第18页 |
1.2 微量铅的检测方法 | 第18-20页 |
1.2.1 双硫腙比色法 | 第18页 |
1.2.2 极谱法 | 第18-19页 |
1.2.3 氢化物-原子荧光光谱法 | 第19页 |
1.2.4 X射线荧光光谱法 | 第19页 |
1.2.5 火焰原子吸收光度法(FAAS) | 第19页 |
1.2.6 石墨炉原子吸收光度法(GFASS) | 第19页 |
1.2.7 电感耦合等离子体法(ICP-MS) | 第19页 |
1.2.8 溶出伏安法 | 第19页 |
1.2.9 微分电位溶出法 | 第19-20页 |
1.3 铅暴露对神经系统的影响 | 第20-22页 |
1.3.1 大脑神经元发育过程及意义 | 第20-21页 |
1.3.2 调控神经元发育的分子机制 | 第21-22页 |
1.4 Wnt信号通路以及LncRNA参与的表观遗传调控 | 第22-25页 |
1.4.1 Wnt信号通路 | 第22-23页 |
1.4.2 LncRNA参与的表观遗传调控 | 第23-25页 |
1.5 神经元发育与神经退行性疾病 | 第25页 |
1.6 课题研究的背景,意义以及主要内容 | 第25-28页 |
1.6.1 课题研究的背景及意义 | 第25-26页 |
1.6.2 课题研究的主要内容 | 第26页 |
1.6.3 实验技术路线图 | 第26-28页 |
第二章 食品源性铅暴露通过Wnt信号通路对发育期大鼠海马区新生神经元增殖和分化的影响 | 第28-45页 |
2.1 实验材料 | 第28-32页 |
2.1.1 主要仪器 | 第28页 |
2.1.2 主要药品与试剂 | 第28页 |
2.1.3 主要抗体 | 第28页 |
2.1.4 实验动物 | 第28-29页 |
2.1.5 溶液配制 | 第29-32页 |
2.2 实验方法 | 第32-38页 |
2.2.1 脑部组织铅含量的测定 | 第32页 |
2.2.2 免疫组织化学实验 | 第32-33页 |
2.2.3 Western blot定量检测组织中蛋白含量实验 | 第33-35页 |
2.2.4 海马组织中基因水平的检测 | 第35-38页 |
2.3 数据处理 | 第38页 |
2.4 实验结果 | 第38-43页 |
2.4.1 大鼠大脑海马组织铅含量测定 | 第38-39页 |
2.4.2 发育期铅暴露对大脑海马区神经元发育过程产生的影响 | 第39-40页 |
2.4.3 发育期铅暴露对经典Wnt信号通路关键分子蛋白表达量的影响 | 第40-42页 |
2.4.4 发育期铅暴露对经典Wnt信号通路关键分子mRNA水平的影响 | 第42-43页 |
2.5 讨论 | 第43-45页 |
第三章 食品源性铅暴露对组蛋白H3K4甲基化修饰的影响 | 第45-57页 |
3.1 实验材料 | 第45-46页 |
3.1.1 实验器材 | 第45页 |
3.1.2 主要药品与试剂 | 第45页 |
3.1.3 主要抗体 | 第45页 |
3.1.4 培养基与溶液配制 | 第45-46页 |
3.2 实验方法 | 第46-50页 |
3.2.1 原代海马神经元的培养 | 第46-47页 |
3.2.2 Western blot实验定量检测原代海马神经元细胞中H3K4me2,H3K4me3,MLL1蛋白含量 | 第47页 |
3.2.3 原代海马神经元中各基因水平的检测 | 第47-50页 |
3.3 数据处理 | 第50页 |
3.4 实验结果 | 第50-54页 |
3.4.1 铅暴露对原代海马神经元中H3K4me2,H3K4me3,MLL1含量的影响 | 第50-51页 |
3.4.2 铅暴露对原代海马神经元中组蛋白甲基化酶Kmt2b及其去甲基化酶Kdm1a,Kdm5a的mRNA水平的影响 | 第51-52页 |
3.4.3 铅暴露对原代海马神经元中H3K4me3分布的影响 | 第52-53页 |
3.4.4 铅暴露对原代海马神经元中LncRNA含量的影响 | 第53-54页 |
3.5 讨论 | 第54-57页 |
参考文献 | 第57-66页 |
攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第66-67页 |