摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
目录 | 第7-10页 |
第一章 文献综述 | 第10-16页 |
1 MATH结构域蛋白 | 第10-12页 |
2 MATH结构域蛋白的分类 | 第12-13页 |
3 植物中MATH结构域蛋白功能研究 | 第13-14页 |
4 本研究的目的与意义 | 第14-16页 |
第二章 AtSb3基因的生物信息学及表达谱分析 | 第16-25页 |
1 材料与方法 | 第16-19页 |
·材料 | 第16页 |
·植物材料和培养条件 | 第16页 |
·药品及试剂 | 第16页 |
·仪器设备 | 第16页 |
·方法 | 第16-19页 |
·AtSb3基因生物信息学分析 | 第16-17页 |
·AtSb3基因的表达检测 | 第17-19页 |
2 结果与分析 | 第19-24页 |
·AtSb3基因生物信息学分析 | 第19-23页 |
·AtSb3基因的表达检测 | 第23-24页 |
3 讨论 | 第24-25页 |
第三章 AtSb3基因GUS融合表达载体的构建及组织化学定位 | 第25-45页 |
1 材料和方法 | 第25-36页 |
·材料 | 第25-27页 |
·植物材料及生长条件 | 第25页 |
·菌株与质粒 | 第25页 |
·药品与试剂 | 第25页 |
·主要仪器与设备、耗材 | 第25页 |
·培养基及试剂配方 | 第25-27页 |
·方法 | 第27-36页 |
·AtSb3基因启动子区的功能元件分析 | 第27页 |
·AtSb3基因GUS融合表达载体的构建 | 第27-34页 |
·拟南芥的遗传转化及转化植株的筛选鉴定 | 第34-36页 |
·GUS组织化学定位 | 第36页 |
2 结果与分析 | 第36-44页 |
·AtSb3基因启动子区功能元件的分析 | 第36-39页 |
·pAtSb3pro101::GUS表达载体的构建 | 第39-41页 |
·AtSb3基因启动子区的克隆 | 第39页 |
·PCR产物的测序和比对 | 第39-40页 |
·重组质粒菌落PCR及双酶切验证 | 第40-41页 |
·pAtSb3pro101::GUS转基因植株纯合子的获得 | 第41-42页 |
·转基因pAtSb3pro101::GUS抗性苗的筛选 | 第41-42页 |
·pAtSb3pro101::GUS抗性苗的PCR检测 | 第42页 |
·GUS组织化学染色 | 第42-44页 |
3 讨论 | 第44-45页 |
第四章 AtSb3基因突变体纯合子的筛选和过表达载体的构建 | 第45-57页 |
1 材料与方法 | 第45-49页 |
·材料 | 第45页 |
·植物材料和培养条件 | 第45页 |
·菌株和载体 | 第45页 |
·主要仪器设备 | 第45页 |
·培养基及试剂配方 | 第45页 |
·方法 | 第45-49页 |
·突变体纯合子sb3和cs21的筛选 | 第45-48页 |
·pBI121-35S::AtSb3过表达载体的构建 | 第48-49页 |
·突变体、转基因纯合子植株与野生型植株表型观察 | 第49页 |
2 结果与分析 | 第49-56页 |
·突变体纯合子的获得 | 第49-51页 |
·突变体纯合子的筛选 | 第49-50页 |
·突变体纯合子的表达检测 | 第50-51页 |
·pBI121-35S::AtSb3过表达载体的构建 | 第51-53页 |
·AtSb3基因全长CDS的克隆 | 第51页 |
·PCR产物的测序和比对 | 第51-52页 |
·pBI121-35S::AtSb3过表达载体的菌落PCR及双酶切验证 | 第52-53页 |
·pBI121-35S::AtSb3转基因植株纯合子的获得 | 第53-56页 |
·转基因pBI121-35S::AtSb3抗性苗的筛选 | 第53页 |
·pBI121-35S::AtSb3抗性苗的PCR检测 | 第53页 |
·转基因苗的表达检测 | 第53-54页 |
·突变体、转基因纯合子植株与野生型表型观察 | 第54-56页 |
3. 讨论 | 第56-57页 |
第五章 全文总结与创新点 | 第57-59页 |
1 总结 | 第57页 |
2 创新点 | 第57-59页 |
参考文献 | 第59-64页 |
缩写表 (Abbreviation) | 第64-65页 |
致谢 | 第65-67页 |
作者简介 | 第67页 |