| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略表 | 第9-10页 |
| 1. 文献综述 | 第10-16页 |
| ·乙脑病毒的历史回顾 | 第10-11页 |
| ·乙脑病毒的流行病学特征 | 第11页 |
| ·乙脑病毒的分子生物学特征 | 第11-12页 |
| ·乙脑病毒的形态和基因结构 | 第11页 |
| ·乙脑病毒的蛋白质 | 第11-12页 |
| ·乙脑病毒的病原学特征 | 第12-13页 |
| ·乙脑病毒的理化特性 | 第12-13页 |
| ·乙脑病毒的增殖特性 | 第13页 |
| ·乙脑的诊断方法 | 第13-15页 |
| ·临床症状与病理变化 | 第13页 |
| ·乙脑病毒抗体的检测方法 | 第13-14页 |
| ·乙脑病毒抗原的检测方法 | 第14-15页 |
| ·乙脑的预防和控制 | 第15-16页 |
| 2. 研究目的与意义 | 第16-17页 |
| 3. 材料与方法 | 第17-29页 |
| ·试验材料 | 第17-18页 |
| ·主要试剂和耗材 | 第17页 |
| ·细胞、毒株、菌株以及实验动物 | 第17-18页 |
| ·载体质粒 | 第18页 |
| ·主要试剂的配置 | 第18-20页 |
| ·缓冲液配制 | 第18-19页 |
| ·培养基配制 | 第19-20页 |
| ·实验方法 | 第20-29页 |
| ·常规实验方法 | 第20-22页 |
| ·猪乙型脑炎病毒ELISA抗体检测方法 | 第22-25页 |
| ·猪源乙脑病毒的分离鉴定 | 第25-29页 |
| 4. 实验结果与分析 | 第29-44页 |
| ·猪乙型脑炎病毒ELISA抗体检测试剂盒的研制 | 第29-39页 |
| ·抗原最佳包被浓度和血清最佳稀释度 | 第29页 |
| ·临界值判定标准 | 第29-30页 |
| ·封闭液的选择 | 第30-31页 |
| ·血清稀释液的选择 | 第31页 |
| ·血清最佳反应时间 | 第31页 |
| ·酶标二抗最佳反应时间 | 第31-32页 |
| ·底物最佳反应时间 | 第32页 |
| ·羊抗猪IgG-HRP酶标抗体最佳稀释浓度 | 第32-33页 |
| ·特异性试验 | 第33页 |
| ·敏感性试验 | 第33-34页 |
| ·重复试验 | 第34-36页 |
| ·保存期试验 | 第36-37页 |
| ·符合率试验 | 第37-39页 |
| ·猪源乙型脑炎病毒的分离鉴定 | 第39-44页 |
| ·猪源病料的RT-PCR检测结果 | 第39页 |
| ·细胞的病变观察以及病毒的分离 | 第39-40页 |
| ·间接免疫荧光鉴定结果 | 第40页 |
| ·E基因进化树分析 | 第40-41页 |
| ·全基因组进化树分析 | 第41-42页 |
| ·GX1209株的扩增及滴度 | 第42-43页 |
| ·GX1209株与其他乙脑病毒株核苷酸同源性的比对结果 | 第43-44页 |
| 5. 讨论 | 第44-47页 |
| ·猪乙型脑炎病毒ELISA抗体检测试剂盒的研制 | 第44-45页 |
| ·试剂盒的判定标准 | 第44页 |
| ·试剂盒的敏感性检测 | 第44页 |
| ·试剂盒的保存期 | 第44页 |
| ·试剂盒的符合率 | 第44-45页 |
| ·猪源乙型脑炎病毒的分离鉴定 | 第45-47页 |
| 6. 结论 | 第47-48页 |
| ·猪乙型脑炎病毒ELISA抗体检测试剂盒的研制 | 第47页 |
| ·猪源乙型脑炎病毒的分离鉴定 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-55页 |
| 致谢 | 第55页 |