| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 1 绪论 | 第10-21页 |
| ·分子系统学的概述 | 第10-11页 |
| ·笛鲷属鱼类 | 第11-13页 |
| ·笛鲷属鱼类的介绍 | 第11-12页 |
| ·笛鲷属鱼类分子系统进化的研究 | 第12-13页 |
| ·视蛋白的研究进展 | 第13-20页 |
| ·视蛋白简介 | 第13-14页 |
| ·视蛋白的研究进展 | 第14-20页 |
| ·本论文的内容和目标概述 | 第20-21页 |
| 2 视蛋白基因 DNA 序列的系统进化分析 | 第21-33页 |
| ·实验材料、试剂及仪器 | 第21-22页 |
| ·动物组织材料 | 第21页 |
| ·实验试剂 | 第21页 |
| ·实验仪器 | 第21-22页 |
| ·溶液及其配制方法 | 第22页 |
| ·实验方法 | 第22-24页 |
| ·基因组 DNA 的提取 | 第22-23页 |
| ·目标序列的获得 | 第23-24页 |
| ·数据分析 | 第24页 |
| ·实验结果 | 第24-30页 |
| ·基因组 DNA 的提取 | 第24页 |
| ·笛鲷属鱼类 RH、SWS1 和 SWS2a 目标区段的 PCR 扩增 | 第24-25页 |
| ·笛鲷属鱼类 RH、SWS1 及 SWS2a 基因片段的序列分析 | 第25-26页 |
| ·笛鲷属鱼类的 RH、SWS1 和 SWS2a 进化树分析结果 | 第26-30页 |
| ·讨论 | 第30-33页 |
| 3 LWS 和 RH 基因的克隆及序列分析 | 第33-60页 |
| ·实验材料、试剂及仪器 | 第33-34页 |
| ·动物组织的采集 | 第33页 |
| ·主要试剂既试剂盒 | 第33页 |
| ·主要仪器 | 第33-34页 |
| ·溶液及其配制方法 | 第34页 |
| ·培养基及其配制方法 | 第34页 |
| ·实验方法 | 第34-41页 |
| ·红鳍笛鲷总 RNA 的提取 | 第34页 |
| ·红鳍笛鲷 LWS 和 RH 基因中间片段的获得 | 第34-36页 |
| ·LWS 基因和 RH 基因 cDNA 全长的获得 | 第36-41页 |
| ·结果与分析 | 第41-57页 |
| ·红鳍笛鲷总 RNA 的提取 | 第41-42页 |
| ·红鳍笛鲷 LWS 和 RH 基因的中间片段、3′端及 5′端 cDNA 片段的电泳结果 | 第42-43页 |
| ·LWS 和 RH 基因的 cDNA 全长 | 第43-45页 |
| ·LWS 和 RH 基因开放阅读框的扩增 | 第45-46页 |
| ·核苷酸序列分析 | 第46-48页 |
| ·氨基酸序列分析 | 第48-52页 |
| ·LWS 和 RH 基因蛋白质结构分析 | 第52-54页 |
| ·系统进化分析 | 第54-57页 |
| ·讨论 | 第57-60页 |
| ·LWS 和 RH 基因 cDNA 全长的获得 | 第57页 |
| ·LWS 和 RH 视蛋白序列与结构分析 | 第57页 |
| ·系统进化树分析 | 第57-58页 |
| ·LWS 和 RH 视蛋白基因的进化 | 第58-60页 |
| 4 红鳍笛鲷视蛋白基因的表达分析 | 第60-64页 |
| ·实验材料 | 第60页 |
| ·实验方法 | 第60-61页 |
| ·引物设计 | 第60页 |
| ·各组织 RNA 的提取及 cDNA 模板的制备 | 第60-61页 |
| ·荧光定量 PCR | 第61页 |
| ·数据分析 | 第61页 |
| ·实验结果 | 第61-62页 |
| ·讨论 | 第62-64页 |
| 5 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-74页 |
| 致谢 | 第74-76页 |
| 作者简介 | 第76-77页 |
| 导师简介 | 第77页 |
